Đa dạng chức năng của quần xã vi khuẩn trên san hô ven đảo cát bà và Long Châu, góp phần thích ứng với sự thay đổi của môi trường

243 ĐA DẠNG CHỨC NĂNG CỦA QUẦN XÃ VI KHUẨN TRÊN SAN HÔ VEN ĐẢO CÁT BÀ VÀ LONG CHÂU, GÓP PHẦN THÍCH ỨNG VỚI SỰ THAY ĐỔI CỦA MÔI TRƯỜNG Phạm Thế Thư Viện Tài nguyên và Môi trường Biển Yvan Betteral Viện Nghiên cứu cho Sự phát triển, Cộng hòa Pháp Bùi Thị Việt Hà Trường Đại học Khoa học Tự nhiên, Đại học Quốc gia Hà Nội Nguyễn Đăng Ngãi Viện Tài nguyên và Môi trường Biển Tóm tắt Hệ sinh thái rạn san hô có vai trò quan trọng trong bảo tồn đa dạng sinh học (ĐDSH), tuy nhiên, sự phát triển của san hô đang phải đối mặt nhiều thách thức, trong đó, có sự thay đổi môi trường sống do các hoạt động nhân tác, đặc biệt là vùng ven biển và tác động tiềm tàng của biến đổi khí hậu (BĐKH) (như hiện tượng san hô chết trắng). Vì vậy, nghiên cứu chức năng của quần xã vi khuẩn trên san hô, nhằm xem xét vai trò của chúng với sức khỏe san hô và trong khả năng chống chịu và thích nghi của san hô đối với những thay đổi của môi trường. Do đó, để góp phần làm sáng tỏ vấn đề trên, thí nghiệm đĩa sinh thái (Biolog Ecoplate) về khả năng hấp thụ và chuyển hóa 31 hợp chất hữu cơ thuộc 6 nhóm chất (carbo-hydrates, amino-acids, phenols, carboxylic acids, polymers và amines) của hệ vi khuẩn sống trên 9 loài san hô và môi trường nước xung quanh tại vùng ven đảo Cát Bà và Long Châu (Hải Phòng) đã được tiến hành. Kết quả nghiên cứu đã cho thấy, với sự đa dạng và biến động cũng như sự tương quan đa biến của các yếu tố môi trường tới khả năng hấp thụ và chuyển hóa các chất hữu cơ của hệ vi khuẩn trên san hô, khẳng định vai trò quan trọng của hệ vi khuẩn trong dinh dưỡng và trao đổi chất san hô, làm tăng khả năng thích ứng với sự biến đổi môi trường sống của san hô, trong đó có sự thay đổi tiềm tàng của BĐKH. 1. MỞ ĐẦU Hệ sinh thái rạn san hô có vai trò quan trọng trong bảo tồn ĐDSH, tuy nhiên, sự phát triển của san hô đang phải đối mặt nhiều thách thức, trong đó có sự thay đổi môi trường sống do các hoạt động nhân tác, đặc biệt là vùng ven biển và tác động tiềm tàng của BĐKH (như hiện tượng san hô chết trắng). Vì vậy, nghiên cứu chức năng của quan xã vi khuẩn trên san hô, nhằm xem xét vai trò của chúng với sức khỏe san hô và trong khả năng chống chịu và thích nghi của san hô đối với những thay đổi của môi trường. Đặc biệt, hệ vi khuẩn sống trên san hô biển Việt Nam vẫn chưa được nghiên cứu nhiều. Do đó, để góp phần làm sáng tỏ vấn đề trên, thí nghiệm đĩa sinh thái (Biolog Ecoplate) về khả năng hấp thụ và chuyển hóa 31 hợp chất hữu cơ thuộc 6 nhóm chất (carbo-hydrates, amino-acids, phenols, carboxylic acids, polymers và amines) của hệ vi khuẩn sống trên 9 loài san hô và môi 244 trường nước xung quanh tại vùng ven đảo Cát Bà và Long Châu (Hải Phòng) được tiến hành. Nghiên cứu xác định sự đa dạng, biến động chức năng hấp thụ và chuyển hóa các chất hữu cơ của hệ vi khuẩn sống trên chất nhầy giữa các loài san hô, giữa san hô với môi trường nước xung quanh, giữa các khu vực ven đảo Cát Bà và Long Châu và đánh giá tác động qua lại giữa các yếu tố môi trường và chức năng hệ vi khuẩn với đời sống của san hô. Bài báo này được thực hiện với sự hỗ trợ kinh phí của Đề tài cấp Viện Khoa học và Công nghệ Việt Nam – VAST 07.03/11-12. 2. PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 2.1. Sơ đồ thu mẫu Hình 2.1. Sơ đồ thu mẫu (ven đảo Cát Bà và Long Châu, Hải Phòng) Bảng 2. 1. Ký hiệu các mẫu và tên của các loài san hô nghiên cứu STT Ký hiệu mẫu Tên loài san hô Ghi chú 1 L1 Pavona frondifera San hô khu vực ven đảo Cát Bà (+20°47'19.31"; +107°5' 42.87") 2 L2 Fungia fungites 3 L3 Pavona decussata 4 L4 Pectinia paeonia 5 L5 Sandalothia robusta 6 N1 Nước tầng đáy, rạn san hô 7 L6 Pavona frondifera San hô khu vực ven đảo Long Châu (+20°37'57.45"; +107°8' 46.41") 8 L7 Favites pentagona 9 L8 Acropora pulchra 10 L9 Pavona decussata 11 N2 Nước tầng đáy, rạn san hô 245 2.2. Phương pháp nghiên cứu ngoài hiện trường + Mẫu nước biển được thu bằng máy lấy nước chuyên dụng (Bathomet), chiết vào chai sạch, vô trùng, bảo quản ngay trong điều kiện 4oC và đưa về phòng thí nghiệm xử lý. + Các loài san hô ở trạng thái khỏe mạnh được thu bằng cách sử dụng trang thiết bị lặn SCUBA và các mẫu dịch nhầy san hô (SML) được thu ngay ngoài hiện trường theo phương pháp của Garren và Azam (2010), bảo quản 4oC và thí nghiệm trong vòng 4 giờ. + Các thông số môi trường được đo bằng máy CTD (Nhật Bản) và phân tích theo phương pháp so mầu trên quang phổ kế DR/2000 (Hãng HACH, Hoa Kỳ). 2.3. Phương pháp nghiên cứu trong phòng thí nghiệm Bản Biolog-Ecoplate có 96 giếng, chứa 31 loại hợp chất hữu cơ, thuộc 6 nhóm chất (Bảng 2.2), lặp lại ba lần trên bản giếng, ngoài ra, còn có 3 giếng đối chứng. Mỗi giếng đều chứa Tetrazolium tím như là một chất nhận điện tử, chúng chỉ thị hoạt động của enzym dehydrogenase và được sử dụng như là thước đo hoạt động trao đổi chất của vi khuẩn (Ritchie và Smith, 1995b). Bảng 2.2. Phân nhóm 31 nguồn cacbon thí nghiệm có trên bản Biolog Ecoplate Nhóm chất Chất thí nghiệm Ký hiệu Nhóm chất Chất thí nghiệm Ký hiệu C ar b o -h y d ra te s β-Methyl-D-Glucoside A2 Phenols 2-Hydroxy Benzoic acid C3 D-Galactonic γ-Lactone A3 4-Hydroxy Benzoic acid D3 D-Xylose B2 C ar b o x y li c ac id s Pyruvic-acid methyl-ester B1 i-Erythritol C2 D-Galacturonic acid B3 D-Mannitol D2 γ-Hydroxybutyric acid E3 N-Acetyl-Glucosamine E2 D-glucosaminic acid F2 D-Cellobiose G1 Itaconic Acid F3 Glucose-1-Phosphate G2 α-Ketobutyric acid G3 α-D-Lactose H1 D-Malic acid H3 D,L-α-Glycerol phosphate H2 P o ly m er s Tween 40 C1 A m in o -a ci d s L-Arginine A4 Tween 80 D1 L-Asparagine B4 α-Cyclodextrin E1 LPhenylalanine C4 Glycogen F1 L-Serine D4 Amines Phenylethyl amine G4 L-Threonine E4 Putrescine H4 Glycyl-L-glutamic acid F4 H2O H2O A1 246 Dịch nhầy san hô được pha loãng 10 lần với nước biển lọc qua màng milipore (kích thước lỗ 0,2 µm, đường kính 47 mm), với 150 μl dịch mẫu được thí nghiệm trên mỗi giếng, nuôi trong tối tại 28oC, trong 10 ngày. Sau mỗi 24 giờ nuôi, bản thí nghiệm Biolog-Ecoplate được đo mật độ quang tại bước sóng 590 nm (đỉnh của tetrazodium) bằng máy Microplate Reader – BIO RAD Model 680 (Insam và Goberna, 2004). 2.4. Phương pháp xử lý số liệu + Khả năng hấp thụ và chuyển hóa các nguồn cacbon thí nghiệm (6 nhóm chất với 31 chất hữu cơ) được thể hiện trên giá trị trung bình phát triển mầu của giếng thí nghiệm (AWCD – Average Well Color Development) và AWCD cho mỗi cơ chất i trong mỗi đĩa j tại thời điểm t được tính theo công thức của Garland và Mills (1991):       31 1 ,, 31 1 , i tjiODtjAWCD Trong đó, OD là mật độ quang của mỗi giếng. + Hệ số tương quan Pearson, so sánh tương đồng (phương pháp phân nhóm – UPGMA), phân tích thành phần chính (PCA) đã được sử dụng rộng rãi để đánh giá sự tương tác giữa sự đa dạng chức năng của các hệ vi khuẩn với các yếu tố môi trường với phầm mềm XLSTAT 2011 (Garland và Mills, 1991). 3. KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU 3.1. Khả năng hấp thụ các nhóm chất hữu cơ của của hệ vi khuẩn 3.1. 1. Trung bình khả năng hấp thụ các nhóm chất thí nghiệm Trung bình - Cát Bà 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 A m in o - ac id s am in es ca rb o - h y d ra te s ca rb o x y li c ac id s p h en o ls p o ly m er s A W C D Trung bình - Long Châu 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 A m in o - ac id s am in es ca rb o - h y d ra te s ca rb o x y li c ac id s p h en o ls p o ly m er s A W C D Hình 3.1. Khả năng hấp thụ các nhóm chất thí nghiệm của hệ vi khuẩn Từ kết quả Hình 3.1 cho thấy, tất cả 6 nhóm chất hữu cơ thí nghiệm đều được hệ vi khuẩn sống trên các loài san hô khu vực nghiên cứu hấp thụ và chuyển hóa, và trung bình khả năng hấp thụ 6 nhóm chất hữu cơ thí nghiệm ở 2 mặt cắt (Cát Bà và Long Châu) đều có xu hướng tương tự nhau. Trong đó, khả năng hấp thụ của hệ vi khuẩn có xu hướng biến động giảm dần từ nhóm chất polymers, carboxylic acids và lần lượt tới nhóm chất carbo-hydrates, amino-acids và tới nhóm phenols và nhóm amines. 247 3.1.2. Khả năng hấp thụ các nhóm chất trên các loài san hô khu vực Cát Bà Kết quả trên Hình 3.2 cho thấy, khả năng hấp thụ các nhóm chất thí nghiệm của hệ vi khuẩn trên các loài san hô là có sự khác nhau, với nhóm chất thí nghiệm amino-acids, carbo-hydrates và nhóm carboxylic acids sự chênh lệch ít giữa các loài san hô nhưng ở các nhóm phenols, polymers và amines thì có sự chênh lệch rõ. Đặc biệt, hệ vi khuẩn sống trên loài san hô (L5) là có khả năng hấp thụ cao nhất với các nhóm chất hữu thí nghiệm trừ nhóm chất amines, thấp nhất là hệ vi khuẩn thuộc loài san hô (L2) với nhóm amines và carbo-hydrates, loài san hô (L3) với nhóm carboxylic acid và phenols, loài L1 với nhóm polymers và nhóm amino-acid là hệ vi khuẩn trong N1. Amino-acids 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 L1 L2 L3 L4 L5 N1 A W C D amines 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 L1 L2 L3 L4 L5 N1 A W C D carbo-hydrates 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 L1 L2 L3 L4 L5 N1 A W C D carboxylic acids 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 0.60 L1 L2 L3 L4 L5 N1 A W C D phenols 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 L1 L2 L3 L4 L5 N1 A W C D polymers 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 0.60 0.70 L1 L2 L3 L4 L5 N1 A W C D Hình 3.2. Hấp thụ các nhóm chất của hệ vi khuẩn trên các loài san hô vùng đảo Cát Bà 3.1.3. Khả năng hấp thụ các nhóm chất trên các loài san hô khu vực Long Châu Tương tự như kết quả ở khu vực ven đảo Cát Bà, thì ở ven đảo Long Châu cũng cho thấy khả năng hấp thụ các nhóm chất thí nghiệm của các hệ vi khuẩn trên các loài san hô khác nhau là 248 khác nhau (Hình 3.3). Đặc biệt, hệ vi khuẩn có khả năng hấp thụ cao nhất với các nhóm chất amino-acid và polymers là loài san hô ký hiệu L7, nhóm amines và carboxylic acid là loài san hô ký hiệu L6, nhóm carbo-hydrates và phenols là loài san hô ký hiệu L8. Khả năng hấp thụ thấp nhất các chất hữu cơ của nhóm phenols và amines là hệ vi khuẩn sống trên loài san hô ký hiệu L9, với các nhóm chất khác là hệ vi khuẩn trong môi trường nước N2. Amino-acids 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 0.60 L6 L7 L8 L9 N2 A W C D amines 0.00 0.05 0.10 0.15 0.20 0.25 0.30 L6 L7 L8 L9 N2 A W C D carbo-hydrates 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 0.60 L6 L7 L8 L9 N2 A W C D carboxylic acids 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 0.60 0.70 0.80 L6 L7 L8 L9 N2 A W C D phenols 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 L6 L7 L8 L9 N2 A W C D polymers 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 0.60 0.70 L6 L7 L8 L9 N2 A W C D Hình 3.3. Hấp thụ các nhóm chất của vi khuẩn trên các loài san hô vùng đảo Long Châu Hơn nữa, sự tương đồng về khả năng hấp thụ các chất thí nghiệm của hệ vi khuẩn trong các mẫu (Hình 3.4) theo môi trường thu mẫu thì có sự khác nhau giữa môi trường nước xung quanh và trên các loài san hô (chia thành 2 nhóm – Hình a), xét theo từng mẫu thì khả năng hấp thụ các chất thí nghiệm được chia thành 3 nhóm (Hình b). 249 Từng chất thí nghiệm L 6 L 2 L 9 L 7 N 2 L 5 L 8 N 1 L 3 L 1 L 4 -0.22 -0.02 0.18 0.38 0.58 0.78 0.98 S im il a ri ty Hình 3.4. Phân nhóm tương đồng về khả năng hấp thụ và chuyển hóa các chất 3.2. Biến động khả năng hấp thụ các chất hữu cơ của vi khuẩn 3.2.1. Biến động theo khu vực 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 Amino- acids amines carbo- hydrates carboxylic acids phenols polymers A W C D Môi trường nước -CB Môi trường nước-LC Hình 3.5. Khả năng hấp thụ các nhóm chất hữu cơ của hệ vi khuẩn trong môi trường nước giữa hai vùng nghiên cứu 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 0.60 0.70 Amino- acids amines carbo- hydrates carboxylic acids phenols polymers A W C D San hô khỏe-CB San hô khỏe-LC Hình 3.6. Khả năng hấp thụ các nhóm chất hữu cơ của hệ vi khuẩn trên san hô giữa hai vùng nghiên cứu 250 Từ kết quả trên Hình 3.5 cho thấy, khả năng hấp thụ và chuyển hóa các hợp chất hữu cơ thí nghiệm của hệ vi khuẩn trong môi trường nước xung quanh các loài san hô nghiên cứu tại khu vực Cát Bà có xu hướng cao hơn so với môi trường nước xung quanh các loài san hô khu vực Long Châu. Nhưng xu hướng này lại trái lại khi xét đến khả năng hấp thụ và chuyển hóa các nhóm chất hữu cơ thí nghiệm của các hệ vi khuẩn trên san hô giữa hai vùng nghiên cứu ngoại trừ nhóm chất amines (Hình 3.6). 3.2.2. Biến động theo môi trường Cát Bà 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 Amino-acids amines carbo- hydrates carboxylic acids phenols polymers A W C D San hô khỏe-CB Môi trường nước -CB Hình 3.7. Khả năng hấp thụ các nhóm chất hữu cơ của hệ vi khuẩn trên san hô và môi trường nước vùng Cát Bà Long Châu 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 Amino-acids amines carbo- hydrates carboxylic acids phenols polymers A W C D San hô khỏe-LC Môi trường nước-LC Hình 3.8. Khả năng hấp thụ các nhóm chất hữu cơ của hệ vi khuẩn trên san hô và môi trường nước vùng Long Châu Kết quả trên Hình 3.7 và Hình 3.8 cho thấy, khả năng hấp thụ và chuyển hóa các hợp chất hữu cơ thí nghiệm của hệ vi khuẩn trên các loài san hô khu vực ven đảo Cát Bà cũng như Long Châu đều có xu hướng cao hơn so với hệ vi khuẩn trong môi trường nước xung quanh các loài san hô, ngoại trừ nhóm chất phenols ở khu vực Cát Bà. 251 3.2.3. Biến động theo sự phân bố của loài san hô Từ kết quả trên Hình 3.9 cho thấy, khả năng hấp thụ và chuyển hóa các hợp chất hữu cơ thí nghiệm của hệ vi khuẩn trên cùng một loài san hô (Pavona frondifera) trong khu vực ven đảo Cát Bà có xu hướng thấp hơn so với khu vực ven đảo Long Châu, đặc biệt là ở khả năng hấp thụ các chất thí nghiệm nhóm chất carbo-hydrates. Xu hướng này cũng xuất hiện khi nghiên cứu trên loài san hô Pavona decussata phân bố ở khu vực ven đảo Cát Bà và Long Châu, ngoại trừ khả năng hấp thụ và chuyển hóa các chất hữu cơ thuộc nhóm chất amines (Hình 3.10). Pavona frondifera 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 0.60 Amino-acids amines carbo- hydrates carboxylic acids phenols polymers A W C D Cát Bà long Châu Hình 3.9. Khả năng hấp thụ các nhóm chất hữu cơ của hệ vi khuẩn trên loài san hô Pavona frondifera giữa hai vùng nghiên cứu Pavona decussata 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 0.60 Amino-acids amines carbo- hydrates carboxylic acids phenols polymers A W C D Cát Bà long Châu Hình 3.10. Khả năng hấp thụ các nhóm chất hữu cơ của hệ vi khuẩn trên loài san hô Pavona decussata giữa hai vùng nghiên cứu 3.3. Tương quan giữa khả năng hấp thụ các chất hữu cơ của hệ vi khuẩn với một số yếu tố môi trường Từ hệ số Pearson trên Bảng 3.1 cho thấy, mối tương quan giữa khả năng hấp thụ và chuyển hóa các nhóm chất thí nghiệm với các yếu tố môi trường là rất ít, trong đó chỉ nhóm amino-acids có 252 tương quan với N-NO3- (-0,98), nhóm carboxylic acids với yếu tố Chl.a (0,95), đặc biệt nhóm chất phenols có tương quan với cả 3 yếu tố môi trường là N-NO2-, P-PO43- và Si- SiO32- (tương ứng: 0,98; 0,98 và 0,97) Bảng 3.1. Hệ số Pearson giữa khả năng hấp thụ các nhóm chất với một số yếu tố môi trường Thông số Amino- acids Amines Carbo- hydrates Carboxylic acids Phenols Polymers Amino-acids 1,00 0,92 0,78 0,97 -0,85 0,56 Amines 0,92 1,00 0,96 0,99 -0,59 0,84 Carbo-hydrates 0,78 0,96 1,00 0,92 -0,35 0,95 Carboxylic acids 0,97 0,99 0,92 1,00 -0,69 0,75 Phenols -0,85 -0,59 -0,35 -0,69 1,00 -0,05 Polymers 0,56 0,84 0,95 0,75 -0,05 1,00 Nhiệt độ -0,43 -0,06 0,21 -0,19 0,84 0,50 Độ mặn (‰) 0,23 -0,10 -0,32 0,02 -0,62 -0,54 Độ đục 0,59 0,55 0,47 0,57 -0,50 0,34 Chl.a 0,93 0,94 0,86 0,95 -0,69 0,69 BOD5 -0,68 -0,37 -0,12 -0,48 0,93 0,17 COD 0,39 0,64 0,76 0,56 0,05 0,83 N-NO2 - -0,85 -0,59 -0,36 -0,70 0,98 -0,07 N-NO3 - -0,98 -0,85 -0,68 -0,91 0,91 -0,43 N-NH4 + -0,58 -0,23 0,03 -0,36 0,89 0,32 P-PO4 3- -0,93 -0,73 -0,52 -0,82 0,98 -0,24 Si- SiO3 2- -0,88 -0,65 -0,42 -0,74 0,97 -0,14 Các giá trị trên được kiểm tra với độ tin cậy 95% ( = 0,05). Ngoài ra, tổng thể về tác động qua lại của các yếu tố môi trường với khả năng hấp thụ các nhóm chất thí nghiệm (Hình 3.11) cho thấy, các yếu tố môi trường Chl.a, độ đục và COD là những yếu tố có ảnh hưởng mạnh tới khả năng hấp thụ các nhóm chất thí nghiệm, ngoại trừ nhóm phenols. Đặc biệt yếu tố độ mặn (S) có vai trò phân chia giữa khả năng hấp thụ nhóm chất phenols và các nhóm chất khác, và cũng như giữa hệ vi khuẩn trên các loài san hô (Cát Bà SH, Long Châu SH) với trong môi trường nước xung quanh (Cát Bà MT, Long Châu MT). 253 Hình 3.11. Tương quan giữa các yếu tố môi trường với các đặc điểm nghiên cứu 4. THẢO LUẬN Sự khác nhau của AWCD trên các loài san hô khác nhau có thể là do sự thay đổi của mật độ vi khuẩn có trong mẫu nuôi cấy (Garland và Mills, 1991; Preston-Mafham và nnk., 2002). Tuy nhiên, sự khác biệt trong nghiên cứu này (Hình 3.2 và Hình 3.3) có thể do có sự thay đổi thực sự trong thành phần và cấu trúc của các hệ vi khuẩn trên chất nhầy của các loài san hô khác nhau. Điều này cho thấy, sự biến động và đa dạng chức năng của hệ vi khuẩn có trên các loài san hô là có sự khác nhau, điều này cũng góp phần làm tăng khả năng thích ứng của san hô với sự thay đổi nhất định của điều kiện sống. Kết quả nghiên cứu của Diego L. Gil-Agudelo và nnk. (2006) đã chứng minh rằng, có sự biến động trong trao đổi chất của vi khuẩn sống trên các loài san hô khỏe mạnh khi so sánh đa dạng chức năng của các mẫu nghiên cứu theo năm và theo các rạn san hô khác nhau. Điều này cũng được khẳng định qua kết quả nghiên cứu này (Hình 3.9 và Hình 3.10), trên cùng một loài san hô nhưng phân bố ở hai khu vực khác nhau (Cát Bà và Long Châu) là có sự khác nhau. Ritchie và Smith (1995b) cũng như Rohwer và nnk. (2001) cho rằng, sự kết hợp giữa san hô và vi khuẩn sống trong chất nhầy (SML) là sự đặc trưng cho từng loài san hô cụ thể. Nói cách khác, mỗi loài san hô có một hệ vi khuẩn đặc trưng và có những loài vi khuẩn đặc trưng cụ thể. Kết quả nghiên cứu này còn cho thấy, AWCD của các hệ vi khuẩn có sự khác nhau rõ rệt giữa san hô, môi trường nước xung quanh và theo khu vực nghiên cứu (Hình 3.4). Đặc biệt, kết quả cho thấy AWCD ở trên các loài san hô ở cả khu vực ven đảo Cát Bà và Long Châu đều cao hơn so với trong môi trường nước xung quanh (Hình 3.7 và Hình 3.8), kết quả này cũng có thể do thành phần và số lượng trong hệ vi khuẩn trên san hô cao hơn so với môi trường nước xung quanh, điều này đã được khẳng định trong công bố của Ritchie và Smith (1995a, 1995b): số lượng và thành phần hệ vi khuẩn có thể nuôi cấy được ở môi trường chất nhầy san hô cao hơn so với môi trường nước xung quanh, thậm trí cao hơn tới 100 lần, và kết quả này cũng phù hợp với nhiều 254 công bố khác (Wild và nnk., 2004a, 2004b; Rosenberg và nnk., 2007; Rohwer và nnk., 2002). Qua đây cho thấy, sự đa dạng về chức năng và tiềm năng của hệ vi khuẩn trên san hô trong việc hấp thụ và sử dụng các nguồn cacbon khác nhau, cung cấp nguồn dinh dưỡng đa dạng cho nhu cầu sử dụng của san hô (Sala và nnk., 2008). Kết quả nghiên cứu này còn chỉ ra sự thay đổi về mặt định tính AWCD theo không gian của hệ vi khuẩn nhưng hoạt động của chúng sẽ thay đổi theo sự thay đổi của điều kiện môi trường, như điều kiện về: nhiệt độ nước, chất dinh dưỡng, lắng đọng trầm tích, và thành phần hóa học của chất nhầy san hô... do đó, sự tương quan giữa AWCD của các nhóm chất thí nghiệm (Bảng 3.1) với từng yếu tố môi trường ít được thể hiện mà tùy thuộc vào nhóm chất thí nghiệm, chúng sẽ có mối tương quan ở các mức độ khác nhau với các yếu tố môi trường khi xét với đa yếu tố (Hình 3.11), điều này cho thấy AWCD cũng như hệ vi khuẩn sống sẽ chịu sự chi phối đa phương của nhiều yếu tố môi trường. Trong đó, hệ vi khuẩn sống trong SML phụ thuộc lớn vào dịch tiết được sản xuất bởi san hô (Ducklow và Mitchell, 1979), nên những thay đổi trong hệ sẽ góp phần cho thấy những thay đổi trong dịch tiết được sản xuất bởi san hô, ngược lại san hô sống trong môi trường tốt hơn có thể khả năng có dịch tiết tốt hơn cho sự sống và trao đổi chất của hệ vi khuẩn cộng sinh (Hình 3.6, 3.9 và 3.10). 5. KẾT LUẬN 1. Có sự đa dạng chức năng của hệ vi khuẩn trên các loài san hô vùng nghiên cứu và trong môi trường nước xung quanh chúng, có khả năng hấp thụ cả 6 nhóm chất và 31 chất hữu cơ thí nghiệm, có xu hướng biến động giảm dần từ nhóm chất polymers, carboxylic acids và lần lượt tới nhóm chất carbo-hydrates, amino-acids và tới nhóm phenols và amines. 2. Có sự biến động chức năng của hệ vi khuẩn về hấp thụ và chuyển hóa các hợp chất hữu cơ: môi trường chất nhầy của các loài san hô cao hơn so với môi trường nước xung quanh, trong môi trường nước xung quanh, các loài san hô khu vực Cát Bà cao hơn so với khu vực Long Châu và ở trên các loài san hô vùng ven đảo Long Châu, cao hơn so với vùng ven đảo Cát Bà, ngoại trừ nhóm chất amines đặc biệt thấy rõ ở loài san hô Pavona frondifera và Pavona decussata. 3. Sự đa dạng và biến động cũng như sự tương quan đa biến của các yếu tố môi trường tới khả năng hấp thụ và chuyển hóa các chất hữu cơ của hệ vi khuẩn trên san hô cho thấy, vai trò quan trọng của hệ vi khuẩn trong dinh dưỡng và trao đổi chất san hô, tăng khả năng thích ứng với sự biến đổi môi trường sống của san hô, trong đó có sự thay đổi tiềm tàng của BĐKH. TÀI LIỆU THAM KHẢO 1. Diego L. Gil-Agudelo, C. Myers, G.W. Smith and K. Kim, 2006. Changes in the Microbial Communities Associated with Gorgonia ventalina During Aspergillosis Infection. Diseases of Aquatic Organisms, Vol.69: pp. 89-94. 2. Ducklow H.W. and R. Mitchell, 1979. Composition of Mucus Released by Coral Reef Coelenterates. Limnol Oceanogr., Vol.24, No.4: pp. 706-714. 3. Garland J.L. and A.L. Mills, 1991. Classification and Characterization of Heterotrophic Microbial Communities on the Basis of Patterns of Community-level Sole-carbon-source Utiliza-tion. Appl Environ Microbiol., Vol.57, No.8: pp. 2351-2359. 255 4. Garren M. and F. Azam, 2010. New Method for Counting Bacteria Associated with Coral Mucus. Appl Environ Microbiol., Vol.6, No.18: pp. 6128-6133. 5. Insam H. and M. Goberna, 2004. Use of Biolog for the Community Level Physiological Profiling (CLPP) of Environmental Samples. Molecular Microbial Ecology Manual. Second Edition 4.01: pp. 853-860. 6. Preston-Mafham J., L. Boddy and P.F. Randerson, 2002. Analysis of Microbial Community Functional Diversity using Sole-carbon-source Utilisation Profiles a Critique. FEMS Microbiol Ecol., Vol.42: pp. 1-14. 7. Ritchie K.B. and G.W. Smith, 1995a. Preferential Carbon Utilization by Surface Bacterial Communities from Water Mass, Normal, and White-band Diseased Acropora Cervicornis. Mol Mar Biol Biotechnol., Vol.4, No.4: pp. 345-352. 8. Ritchie K.B. and G.W. Smith, 1995b. Carbon-source Utilization of Coral-associated Marine Heterotrophs. J Mar Biotechnol., Vol.3: pp. 107-109. 9. Rohwer F., M. Breitbart, J. Jara, F. Azam and N. Knowlton, 2001. Diversity of Bacteria Associated with the Caribbean Coral Montastraea franksi. Coral Reefs., Vol.20: pp. 85-91. 10. Rohwer F., V. Seguritan, F. Azam and N. Knowlton, 2002. Diversity and Distribution of Coral-associated Bacteria. Mar Ecol Prog Ser., Vol.243: pp. 1-10. 11. Rosenberg E., C.A. Kellogg and F. Rohwer, 2007. Coral Microbiology. Oceanography, Vol.20, No.2: pp. 146-154. 12. Sala M.M., R. Terrado, C. Lovejoy, F. Unrein and C. Pedrós-Alió, 2008. Metabolic Diversity of Heterotrophic Bacterioplankton over Winter and Spring in the Coastal Arctic Ocean. Environmental Microbiology, Vol.10, No.4: pp. 942-949. 13. Wild C., M. Huettel, A. Klueter and S.G. Kremb, 2004a. Coral Mucus Functions as an Energy Carrier and Particle Trap in the Reef Ccosystem. Nature, Vol.428: pp. 66-70. 14. Wild C., M. Rasheed, U. Werner and U. Franke, 2004b. Degradation and Mineralization of Coral Mucus in Reef Environments. Mar Ecol Prog Ser., Vol.267: pp. 159-171. 256 Summary THE FUNCTIONAL DIVERSITY OF CORAL BACTERIAL COMMUNITY IN COAST OF CAT BA AND LONG CHAU ISLANDS CONTRIBUTING TO ADAPT TO ENVIRONMENTAL CHANGE Thu Pham The Institute of Marine Environment and Resources Yvan Betteral Institute Research for Development, France Ha Bui Viet University of Science, Vietnam National University, Hanoi Ngai Nguyen Dang Institute of Marine Environment and Resources Coral reef ecosystems play an important role in biodiversity conservation; however the development of coral reefs is facing many factors including environmental change due to human activities, especially the coastal areas and the potential impacts of climate change (such as coral bleaching...). So the function of bacterial communities on corals to consider their role in the health of coral reefs, their role in resistance and adaptation of corals to climate change has been studied. Therefore, in order to help clarify issues, ecological experiment of Biolog Eco-Plate on the absorption and metabolism of 31 organic compounds in 6 substrate groups (carbohydrates, amino-acids, phenols, carboxylic acids, polymers and amines) of bacterial community living on 9 coral species and the surrounding water environment in Long Chau and Cat Ba islands (Hai Phong) has been carried out. The results have shown that the dynamic and diversity as well as the multivariate correlation of environmental factors relate to the absorption and metabolism of organic substrates of coral bacterial community, which affirms the importance role of bacterial community in the nutrition and metabolism of coral to help increase the adaptability to the environmental change of coral habitat, including potential changes of climate change.