Đề tài Thủy phân saccharose bằng invertase cố định trên hạt calcium alginate

TẠP CHÍ PHÁT TRIỂN KH&CN, TẬP 10, SỐ 04 - 2007 Trang 49 THỦY PHÂN SACCHAROSE BẰNG INVERTASE CỐ ĐỊNH TRÊN HẠT CALCIUM ALGINATE Mai Ngọc Dũng Trường Đại học Khoa học Tự nhiên, ĐHQG-HCM (Bài nhận ngày 24 tháng 08 năm 2006, hoàn chỉnh sửa chữa ngày 24 tháng 04 năm 2007) TÓM TẮT : Thí nghiệm tập trung vào việc so sánh một số tính chất của invertase tự do với invertase cố định. Các phương pháp thí nghiệm bao gồm chế phẩm invetarase được tách chiết từ Saccharomyces cerevisiae theo phương pháp nghiền và tuả bằng ethanol 96% lạnh. Chế phẩm invertase được cố định theo phương pháp nhốt trong gel alginate. So sánh tính chất giữa enzym cố định với enzym tự do như hoạt độ riêng, nhiệt độ và pH tối ưu, khả năng chịu nhiệt theo thời gian. Ngoài ra, enzym cố định được thí nghiệm thêm về số lần tái sử dụng và khả năng thủy phân saccharose theo thời gian. Một số kết quả thu nhận như sau: nồng độ tối ưu cố định là alginate 3,5% với hoạt độ riêng = 3,62 UI/mg-Pr, hiệu suất hoạt độ riêng cố định = 39,14%, hiệu suất protein–enzym cố định = 64,27%, tái sử dụng là 20 lần, khả năng chịu nhiệt khi thủy phân saccharose 7% là 72 giờ liên tục. 1. GIỚI THIỆU Calcium alginate được hình thành từ phản ứng giữa sodium alginate với Ca2+ theo phản ứng trao đổi ion và tạo thành một dạng biocomposite không tan trong nước và dễ dàng tạo hạt hoặc màng. Phản ứng xảy ra như sau : 2Na(alginate) + Ca2+ → Ca(Alginate)2 + 2Na+ (1) Ngoài Ca2+ có khả năng phản ứng với sodium alginate thì các ion như Ba2+ và Sr2+ tạo thành biocomposite có tính chất tương tự như calcium alginate. Riêng Mg2+ cũng có khả năng phản ứng với sodium alginate nhưng sản phẩm tạo thành Mg(Alginate)2 lại tan trong nước. Calcium alginate gồm một hệ thống matrix và chính hệ thống này là yếu tố cơ bản để bẫy các hợp chất sinh học và tế bào. [1] [3] Invertase là một loại enzym thủy phân saccharose được sử dụng khá phổ biến trong công nghiệp nước giải khát và bánh ngọt. Invertase có trong động thực vật, vi sinh vật và đặc biệt là nấm men có khả năng tổng hợp invertase cao. Saccharomyces hiện là vi sinh vật được quan tâm nhiều nhất trong lãnh vực lên men tạo invertase, invertase của Saccharomyces gồm hai loại như sau : invertase nội bào có trong lượng phân tử vào khoảng 135000Da và invertase ngoại bào có trong lượng phân tử vào khoảng 270000Da. [7] Phản ứng thủy phân saccharose do invertase xúc tác như sau: Saccharose (đường không khử) Invertase α-Glucose + β-Fructose (đường khử) (2) Cố định enzym và tế bào bao gồm 4 phương pháp cơ bản như sau [4]: − Phương pháp hấp phụ. − Phương pháp cộng hóa trị. − Phương pháp liên kết chéo (khâu mạch). − Phương pháp bẫy (nhốt). 2.NGUYÊN VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 2.1.Nguyên vật liệu Thu nhận invertase từ nguồn nấm men S.serevisiae của Công ty Cát Tường, sodium alginate của hãng Hải Châu Trung Quốc. Science & Technology Development, Vol 10, No.04 - 2007 Trang 50 2.2.Phương pháp nghiên cứu Các thí nghiệm được thực hiện theo sơ đồ 2.1 Sơ đồ 2.1.Các bước thực hiện thí nghiệm Nấm men S.cerevisiae Thu nhận chế phẩm invertase Xác định: lượng protein – enzyme, Cố định trong gel alginate với các nồng độ hoạt độ riêng, t0opt, pHopt và từ 3,0 – 4,5% khả năng chịu nhiệt. Xác định: nồng độ alginate tối ưu để cố định invertase, lượng protein – enzyme cố định, hoạt độ riêng và khả năng chịu nhiệt của invertase cố định. Nghiên cứu khả năng tái sử dụng và thủy phân saccharose ở nồng độ tối ưu. 2.3.Phương pháp thu nhận chế phẩm invertase [3] − Dịch chiết invertase thu nhận từ nấm men S.cerevisiae bằng phương pháp nghiền. − Kết tủa enzym bằng ethanol 96% lạnh với tỷ lệ dung dịch enzym/ethanol là 1/3. − Ly tâm, thu nhận kết tủa enzym, pha với thể tích nước (V) nhất định và ta có dung dịch invertase (CPInver). 2.4.Định lượng protein-enzym CPInver theo phương pháp Lowry [8] Xác định nồng độ protein-enzym CPInver theo công thức sau : C (mg/ml) = (ΔOD/a.1000)n (công thức 1) Với : − C là nồng độ protein (μg/ml hoặc mg/ml). − a là hệ số góc đường chuẩn, sử dụng hàm Slope của phần mềm Microsoft Excel để tính hệ số a của đồ thị. − ΔOD = ODCPInver – ODkhông với giá trị OD được đo tại bước sóng 750 nm. − n là hệ số pha loãng. − 1000 là hệ số quy đổi từ μg thành mg. Xây dựng đường chuẩn nồng độ protein – enzym theo phương pháp UV với λ = 280 nm [8] − Protein – enzym của CPInver được pha thành các nồng độ 0,2; 0,4; 0,6; 0,8 và 1,0mg/ml. − Xây dựng đường chuẩn và xác định hệ số góc a của dung dịch CPInver. TẠP CHÍ PHÁT TRIỂN KH&CN, TẬP 10, SỐ 04 - 2007 Trang 51 Xác định hoạt độ invertase (HđI) và hoạt độ riêng (HđR) theo phương pháp định lượng đường khử tạo thành với thuốc thử dinitrosalicylic acid (DNS) [6] Xác định hoạt độ invertase theo công thức sau: ĐK HđI (UI/ml) = (công thức 2) V.t Với: − ĐK là lượng đường khử tạo thành được đo ở bước sóng 540 nm. − V là thể tích enzym tham gia phản ứng xúc tác phản ứng. − t là thời gian xúc tác phản ứng. HđI (UI/ml) HđR (UI/mgpr) = (công thức 3) m (mgpr/ml) Với: m là nồng độ protein-enzym CPInver tham gia xúc tác phản ứng. Xác định pHopt, t0opt và khả năng chịu nhiệt của CPInver [2] − Xác định pHopt với pH nghiên cứu trong khoảng từ 3,5 – 5,5. Nồng độ dung dịch saccharose 5%, thời gian xúc tác phản ứng 5 phút và nhiệt độ là 45 0C. − t0opt với t0 nghiên cứu trong khoảng từ 40 – 60 0C. Nồng độ dung dịch saccharose 5%, thời gian xúc tác phản ứng 5 phút và pH là pHopt của thí nghiệm trên. − Khả năng chịu nhiệt của CPInver theo thời gian với pHopt, t0opt của các thí nghiệm trên. Riêng t0 sẽ giảm như sau : t0opt, t0opt – 5, t0opt – 10, . . . và thời gian kéo dài từ 1, 2, 3, 4, 5 giờ ... Cố định invertase trên hạt Ca-alginate [5] − Cố định CPInver có nồng độ 2mg/ml trong các nồng độ alginate khác nhau từ 3,5 – 4,5% ‘Hạt-Inver’ (w/w) và xác định HđR từng loại Hạt-Inver khác nhau theo phương pháp mục 2.2.4 nhưng mẫu không là những loại hạt không có protein – enzym tương ứng ở các nồng độ alginate như trên ‘Hạt 0’. − Xác định hiệu suất cố định protein – enzym của từng loại Hạt-Inver khác nhau. − Xác định hiệu suất hoạt độ riêng cố định của từng loại Hạt-Inver khác nhau. − Xác định pH, t0 và n0 cơ chất tối ưu của Hạt-Inver. − Xác định số lần tái sử dụng và khả năng thủy phân saccharose theo thời gian. 3.KẾT QUẢ 3.1.Xác định hàm lượng protein – enzym CPInver theo phương pháp Lowry 3.1.1.Xây dựng đường chuẩn albumin Đường chuẩn nồng độ albumin được thể hiện ở đồ thị 3.1 Science & Technology Development, Vol 10, No.04 - 2007 Trang 52 Đồ thị 3.1.Đường chuẩn nồng độ albumin (μg/ml) Sử dụng hàm Slope xác định hệ số góc a của đường chuẩn nồng độ albumin là 0,0011. CPInver được pha loãng 100, xác định giá trị ODT với λ = 750 nm và dựa vào công thức 1 mục 2.2.2 xác định được nồng độ protein – enzym CPInver được thể hiện ở bảng 3.1. Bảng 3.1.Nồng độ protein – enzym của CPInver Mẫu số Giá trị 1 2 3 Giá trị OD Trung bình ΔOD Nồng độ protein – enzym (μg/ml) OD0 0,058 0,058 0,058 0,058 ODT 0,174 0,179 0,169 0,174 0,116 105,46 Vậy n0 protein – enzym của CPInver : 105,46 x 100 = 10546 μg/ml hoặc 10,546mg/ml. 3.1.2.Xây dựng đường chuẩn nồng độ protein – enzym theo phương pháp UV với λ = 280 nm Ý nghĩa của phương pháp này là sử dụng đường chuẩn n0 protein – enzym CPInver để xác định lượng protein – enzym có trong dung dịch sau khi cố định enzym và xác định lượng protein – enzym cố định trong hạt Ca-alginate theo công thức sau : MPr - En cố định = mPr - En ban đầu – mPr - En trong dung dịch sau khi cố định Với: mPr-En : lượng protein – enzym. Sử dụng công thức CV = C’V’ để pha loãng dung dịch CPInver ở các nồng độ từ 0,2 – 1,0 mg/ml và xây dựng đường chuẩn n0 protein – enzym của CPInver tương tự như mục 3.1.1 nhưng giá trị OD được đo ở bước sóng 280 nm và kết quả được thể hiện ở đồ thị 3.2. 0.159 0.214 0.280 0.058 0.111 0.00 0.05 0.10 0.15 0.20 0.25 0.30 0 50 100 150 200 250 G iá tr ị Δ O D , λ = 7 50 nm Nồng độ albumine chuẩn (μg/ml) TẠP CHÍ PHÁT TRIỂN KH&CN, TẬP 10, SỐ 04 - 2007 Trang 53 2.115 0.451 0.912 1.319 1.777 0.0 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5 0 5 10 15 20 25 G iá tr ị Δ O D , λ = 5 40 nm Nồng độ glucose (μmol/ml) Đồ thị 3.2.Đường chuẩn nồng độ protein – enzym CPInver (mg/ml) Sử dụng hàm Slope xác định được hệ số góc a của đường chuẩn nồng độ protein – enzym là 2,0501. 3.2.Xác định pHopt, t0opt và khả năng chịu nhiệt của CPInver 3.2.1.Xây dựng đường chuẩn dung dịch glucose Dung dịch glucose được pha thành các nồng độ 5, 10, 15, 20 và 25 μmol/ml và xác định giá trị OD với λ = 540 nm. Đường chuẩn nồng độ glucose được thể hiện ở đồ thị 3.3 Đồ thị 3.3.Đường chuẩn nồng độ glucose (μmol/ml) Sử dụng hàm Slope xác định được hệ số góc a của đường chuẩn nồng độ glucose là 0,0855. 1.235 1.560 0.784 0.420 2.096 0.0 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5 0.0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0 G iá tr ị Δ O D , λ = 2 80 nm Nồng độ protein – enzym CPInver (mg/ml) Science & Technology Development, Vol 10, No.04 - 2007 Trang 54 0 2 4 6 8 10 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 450C 500C 550C 450C 500C 50C Thời gian (giờ) H đR (U I/m g- Pr ) 3.2.2.Xác định pHopt, t0opt và khả năng chịu nhiệt của CPInver − Xác định pHopt: Điều kiện thí nghiệm gồm n0 saccharose 5%, t0 = 40 0C và pH thay đổi từ 3,5 – 5,5 thì HđR của CPInver = 5,142 UI/mg-Pr cao nhất tại pH = 4,5. Kết quả được thể hiện ở đồ thị 3.4. − Xác định t0opt: Điều kiện thí nghiệm gồm n0 saccharose 5%, pH = 4,5 và t0 thay đổi từ 40 – 60 0C thì HđR của CPInver = 9,25 UI/mg-Pr cao nhất tại nhiệt độ 55 0C. Kết quả được thể hiện ở đồ thị 3.5. Đồ thị 3.4.Sự phụ thuộc HđR vào pH Đồ thị 3.5.Sự phụ thuộc HđR vào t0 Khả năng chịu nhiệt của CPInver theo thời gian được thể hiện ở đồ thị 3.6. Đồ thị 3.6.Khả năng chịu nhiệt của CPInver tại các nhiệt độ 45, 50 và 55 0C theo thời gian CPInver có khả năng chịu nhiệt và kéo dài 24 giờ tại nhiệt độ 45 0C với HđR trung bình 5,08 ± 0,35 UI/mg-Pr. Trong khi tại nhiệt độ 500C thì hoạt tính ổn định trong 9 giờ với HđR 1.55 3.46 5.14 4.40 4.27 0 1 2 3 4 5 6 3.5 4.0 4.5 5.0 5.5 6.59 4.96 5.83 7.24 9.25 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 40 45 50 55 60 pH Nhiệt độ (C) H đR (U I/m g- Pr ) H đR (U I/m g- Pr ) TẠP CHÍ PHÁT TRIỂN KH&CN, TẬP 10, SỐ 04 - 2007 Trang 55 trung bình 7,69 ± 0,64 UI/mg-Pr và giờ thứ 10 HđR suy giảm hơn 50%. Tại nhiệt độ 55 0C chỉ ổn định trong 5 giờ với HđR trung bình 8,22 ± 0,75 UI/mg-Pr và suy giảm 50% HđR ở giờ thứ 6. 3.3. Kết luận tổng hợp Thí nghiệm 3.2.2 với ý nghĩa thiết lập các điều kiện tối ưu của CPInver với mục đích so sánh với chế phẩm invertase cố định tại các điều kiện nêu trên. 3.3.1.Cố định invertase trong hạt Ca-alginate Hiệu suất protein – enzym cố định thay đổi theo nồng độ alginate được thể hiện ở bảng 3.2. HđR của các loại Hạt-Inver được thể hiện ở bảng 3.2 Ảnh hưởng nồng độ alginate lên HđR của Hạt-Inver Bảng 3.2.Ảnh hưởng nồng độ alginate lên HđR của Hạt-Inver n0 alginate 3,0 3,5 4,0 4,5 Hiệu suất cố định protein – enzym (%) 55,72 64,27 55,36 53,35 Thí nghiệm lần 1 2,18 3,51 3,25 1,49 Thí nghiệm lần 2 2,06 3,72 3,27 1,64 HđR (UI/mg-Pr) Thí nghiệm lần 3 2,03 3,64 3,34 1,24 HđR trung bình (UI/mg-Pr) 2,09 3,62 3,29 1,46 Hiệu suất HđR cố định (%) 22,59 39,14 35,57 15,78 Điều kiện thí nghiệm: nồng độ saccharose 5%, pH = 4,5 và nhiệt độ 55 0C. HđR trung bình đạt 3,62 ± 0,11 UI/mg-Pr với hiệu suất HđR cố định là 39,14% của Hạt-Inver 3,5% so với CPInver trong cùng một điều kiện thí nghiệm. 3.3.2.Ảnh hưởng nồng độ cơ chất lên HđR của Hạt-Inver 3,5% Bảng 3.3 Ảnh hưởng nồng độ cơ chất lên HđR của Hạt-Inver 3,5% Nồng độ saccharose (%) 4 5 6 7 8 9 HđR Thí nghiệm lần 1 3,60 4,36 5,68 5,75 5,23 4,60 HđR Thí nghiệm lần 2 3,95 4,29 5,65 5,78 5,28 4,62 HđR Thí nghiệm lần 3 3,67 4,30 5,73 5,87 5,29 4,56 HđR trung bình (UI/mg) 3,74 4,32 5,69 5,80 5,27 4,59 Hiệu suất HđR cố định (%) 32,92 38,03 50,09 51,06 46,39 40,40 Điều kiện thí nghiệm: nồng độ saccharose 7%, pH = 4,5 và nhiệt độ 55 0C. HđR trung bình đạt 5,80 ± 0,06 UI/mg-Pr với hiệu suất HđR cố định là 51,06% của Hạt-Inver 3,5% so với CPInver trong cùng một điều kiện thí nghiệm. Science & Technology Development, Vol 10, No.04 - 2007 Trang 56 7.04 9.00 7.28 11.13 10.15 12.14 0 2 4 6 8 10 12 14 1 2 3 4 5 6 Lư ợn g đư ờn g kh ử (μ m ol /m l) Số lần (lần/12giờ) 5.17 6.76 0 2 4 6 8 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20H đR c ủa H ạt -I nv er 3 ,5 % (U I/m g- Pr ) Tái sử dụng (lần) 3.3.3.Xác định khả năng tái sử dụng của Hạt-Inver 3,5% Đồ thị 3.7.Khả năng tái sử dụng của Hạt-inver 3,5% Điều kiện thí nghiệm : nồng độ saccharose 7%, pH = 4,5 và nhiệt độ = 55 0C. HđR của Hạt- Inver 3,5% dao động từ 5,17 – 6,67 UI/mg-Pr, HđR trung bình trong 20 lần tái sử dụng là 6,07 ± 0,40 UI/mg-Pr. 3.3.4.Khả năng thủy phân saccharose của Hạt-Inver 3,5% Kết quả thí nghiệm 3.2.2 đã xác định khả năng chịu nhiệt của CPInver là 45 0C và kéo dài liên tục trong 24 giờ. Hạt-Inver 3,5% được thí nghiệm với các điều kiện sau: 5 g hạt, 8 ml saccharose 7%, nhiệt độ 450C, thời gian thủy phân là 12 giờ/lần và xác định lượng đường khử sinh ra (μmol đường khử/ml) và được lặp lại nhiều lần liên tục. Kết quả được thể hiện ở biểu đồ 3.1. Biểu đồ 3.1.Lượng đường khử sinh ra theo số lần lặp lại TẠP CHÍ PHÁT TRIỂN KH&CN, TẬP 10, SỐ 04 - 2007 Trang 57 Lượng đường khử tạo ra dao động từ 7,04 – 12,14 μmol đường khử/ml và lượng đường khử trung bình là 9,46 ± 2,06 μmol đường khử/ml sau 6 lần lặp lại liên tục với tổng thời gian thí nghiệm là 72 giờ. 4.KẾT LUẬN Do thời gian thí nghiệm có hạn nên các kết quả thu nhận còn hạn chế. Qua các kết quả thí nghiệm, chúng tôi xác định Hạt-Inver 3,5% đạt những điều kiện tối ưu như sau : - Hiệu suất cố định protein – enzym đạt 64, 27%. - Hiệu suất hoạt độ riêng cố định đạt 39,14% khi nồng độ saccharose 5% và 51,06% khi nồng độ saccharose 7% với pH = 4,5 và nhiệt độ là 55 0C so sánh cùng điều kiện thí nghiệm của CPInver. - Số lần tái sử dụng là 20 lần với hoạt độ riêng trung bình là 6,07 ± 0,40 UI/mg-Pr trong điều kiện thí nghiệm : nhiệt độ là 55 0C, pH = 4,5 và nồng độ saccharose 7%. - Số lần tái sử dụng là 6 lần với mỗi lần là 12 giờ, lượng đường khử trung bình sinh ra là 9,46 ± 2,06 μmol/ml trong điều kiện thí nghiệm : nhiệt độ là 45 0C, pH = 4,5 và nồng độ saccharose 7%. THE HYDROLYZING SACCHAROSE USING THE IMMOBILIZED INVERTASE IN CALCIUM ALGINATE BEADS Mai Ngoc Dung University of Natural Sciences, VNU-HCM ABSTRACT: The research focused on the comparing properties of free invertase with immobilized invertase. Methods including purified invertase was extracted from saccharomyces cerevisiae by crushing and then precipitating cool 96% ethanol. Purified invertase was immobilized by alginate gel entrapment. The properties of immobilized enzyme were compared with free enzyme such as special activity, optimum temperature and pH, thermal stability for times. In addition, immobilized enzyme was carried out the reuse and the ability of saccharose hydrolyzing versus time of the optimum. Some results are following: optimum concentration of immobilization is 3.5% alginate which special activity = 3.62 UI/mg-Pr, immobilized yield of special activity = 39.14%, protein–enzyme immobilized yield = 64.27%, recycle is 20 times and the thermal stability is 72 hrs with 7% saccharose hydrolyzing. TÀI LIỆU THAM KHẢO [1]. Alginate. London South Bank University, Source Alginates (E400-E404) are produced by brown seaweeds (Phaeophyceae, mainly Laminaria) (10/2003) [2]. R.Bergamasco, F.J.Bassetti, F.F.de Moraes and G.M.Zanin. Characterization of Free And Immobilized Invertase Regarding Activity And Energy Of Activation. Brazilian Journal of Chemical Engineering. vol.17 n.4-7 São Paulo Dec.(2000) Science & Technology Development, Vol 10, No.04 - 2007 Trang 58 [3]. Đồng Thị Thanh Thu. Enzyme Cố định. Đại học Khoa học Tự nhiên TP Hồ Chí Minh. (1999) [4]. Hung Pham and Lisa-Marie Usher. Enzyme Immobilization Methods, Immobilized Enzymes are defined as enzymes physically confined in a certain region with retention of their catalytic activities. Method for enzyme emmobilization. [5]. [6]. Nam Sun Wang. Cell Immobilization With Calcium Alginate. Department of Chemical Engineering University of Maryland. (2003) [7]. Nam Sun Wang. Enzyme Kinetics Of Invertase Via Initial Rate Determination. Department of Chemical Engineering University of Maryland. 2003. [8]. Nomenclature Committee of the International Union of Biochemistry and Molecular Biology (NC-IUBMB). Enzyme Nomenclature. EC 3.2.1.26. (2000) [9]. Wilbur H. Lecture 1 Protein Assay. BL483 Biochemistry Techniques. (1999)