KHẢO SÁT KHẢ NĂNG TỔNG HỢP AMYLASE,PROTEASE CỦA CHỦNG VI KHUẨN PHÂN LẬP TỪ AO NUÔI CÁ TRA
LÊ UYỂN THANH
Trang nhan đề
Lời cảm ơn
Mục lục
Danh mục
Lời mở đầu
Chương_1: Tổng quan tài liệu
Chương_ 2: Vật liệu và phương pháp
Chương_ 3: Kết quả và biện luận
Chương_ 4: Kết luận và đề nghị
Tài liệu tham khảo
Phụ lục
MỤC LỤC
Trang
Trang phụ bìa
Lời cảm ơn
Danh mục các chữ viết tắt
Danh mục các Bảng biểu
Danh mục Hình - Biểu đồ - Sơ đồ - Đồ thị
LỜI MỞ ĐẦU
PHẦN 1: TỔNG QUAN TÀI LIỆU 1
1.1 Thực trạng ô nhiễm do nghề nuôi cá Tra trên địa bàn tỉnh Đồng
Tháp 1
1.1.1 Khái quát về ngành nuôi trồng thủy sản và nghề nuôi cá Tra 1
1.1.2 Một số tác động tiêu cực lên môi trường do nghề nuôi cá Tra .3
1.2. Một số giải pháp giúp hạn chế và khắc phục tình trạng ô nhiễm 8
1.2.1 Các giải pháp về quản lý .8
1.2.2 Các giải pháp về quy hoạch .9
1.2.3 Các giải pháp về khoa học công nghệ .9
1.2.4 Các giải pháp về kỹ thuật 10
1.3 Khái quát về hệ vi khuẩn trong nước 12
1.3.1 Vi khuẩn trong nước ngọt .12
1.3.2 Một số chuyển hóa vật chất do vi khuẩn dị dưỡng trong nước 13
1.3.2.1 Thủy phân tinh bột 13
1.3.2.2 Chuyển hóa protein .14
1.3.2.3 Ý nghĩa của quá trình amon hóa protein 16
PHẦN 2: VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP 19
2.1. Vật liệu 19
2.1.1 Chủng vi sinh vật 19
2.1.2 Môi trường phân lập, giữ giống và nuôi cấy 19
2.1.2.1. Môi trường phân lập và nuôi cấy .19
2.1.2.2 Môi trường khảo sát amylase ngoại bào .20
2.1.2.3 Môi trường khảo sát protease ngoại bào .21
2.1.2.4 Môi trường nuôi cấy khảo sát hoạt độ amylase .21
2.1.2.5 Môi trường nuôi cấy khảo sát hoạt độ protease 22
2.1.2.6 Môi trường khảo sát một số điều kiện ảnh hưởng lên
hoạt độ amylase .23
2.1.2.7 Môi trường khảo sát một số điều kiện ảnh hưởng lên
hoạt độ protease .24
2.1.2.8 Môi trường nước ao cá Tra .24
2.2 Phương pháp 25
2.2.1 phương pháp phân lập: .25
2.2.1.1 Phương pháp lấy mẫu nước 25
2.2.1.2 Phương pháp phân lập và giữ giống 25
2.2.1.3 Phương pháp nhuộm Gram .25
2.2.1.4 Phương pháp quan sát vi sinh vật .26
2.2.2 Phương pháp xác định trực tiếp số lượng vi sinh vật bằng buồng
đếm hồng cầu: 27
2.2.3 Phương pháp định lượng tế bào bằng phương pháp đo mật độ
quang .28
2.2.4 Phương pháp khảo sát khả năng tổng hợp amylase, protease
ngoại bào .28
2.2.4.1 Amylase 28
2.2.4.2 Protease 29
2.2.5 Phương pháp xác định hoạt độ protease theo Anson .30
2.2.6 Phương pháp xác định hoạt độ amylase theo Heinkel 31
2.2.7 Phương pháp nuôi cấy vi sinh vật .33
2.2.7.1 Phương pháp cấy chuyền và giữ giống trên môi trường
thạch nghiêng 33
2.2.7.2 Phương pháp nuôi cấy bề sâu (nuôi cấy chìm) .33
2.2.8 Phương pháp thu nhận dịch enzyme thô 34
2.2.9 Phương pháp xác định thời gian nuôi cấy vi khuẩn để thu nhận
protease và amylase có hoạt độ cao nhất 34
2.2.10 Phương pháp định danh 35
2.2.11 Phương pháp khảo sát tác dụng của chủng vi khuẩn lên môi
trường nước ao nuôi cá Tra .35
2.2.12. Phương pháp xác định pH 35
2.2.13 Phương pháp xác định Carbon hữu cơ tổng số .36
2.2.14 Phương pháp xác định Tổng NH3 .37
2.2.15 Phương pháp xác định tổng chất rắn lơ lửng 39
2.2.16 Phương pháp xác định tổng lượng vi sinh 40
2.2.17 Phương pháp sử dụng phần mềm Microsoft Exel vào xử lý,
tính toán các kết quả thí nghiệm 41
2.2.18 Phương pháp bố trí thí nghiệm và sơ đồ thí nghiệm .41
2.2.18.1 Phương pháp bố trí thí nghiệm .41
2.2.18.2 Sơ đồ thí nghiệm .41
PHẦN 3: KẾT QUẢ VÀ BIỆN LUẬN .43
3.1 Phân lập, làm thuần và chọn lọc 43
3.1.1 Phân lập và làm thuần các chủng vi khuẩn từ mẫu nước ao nuôi
cá Tra .43
3.1.1.1 Phân lập và làm thuần .43
3.1.1.2 Nhuộm Gram 44
3.1.2 Định lượng khả năng tổng hợp amylase và protease của các
chủng vi khuẩn phân lập được trên môi trường thạch đĩa .46
3.1.2.1 Trên môi trường tăng sinh amylase 46
3.1.2.2 Trên môi trường tăng sinh protease 48
3.1.3 Khảo sát khả năng tổng hợp amylase và protease của một số
chủng cho hoạt tính cao trên môi trường lỏng 49
3.1.3.1 Khả năng tổng hợp amylase của các chủng 7, 8, 10, 12,
15.1 trên môi trường tăng sinh amylase .49
3.1.3.2 Khả năng tổng hợp protease của các chủng 3, 8, 12, 16,
26.2 trên môi trường tăng sinh protease .50
3.2 Định danh vi khuẩn .51
3.3 Khảo sát một số yếu tố ảnh hưởng đến hoạt độ amylase, protease
của chủng 8 (Bacillus subtilis) khi nuôi cấy trên môi trường lỏng 52
3.3.1 pH .52
3.3.1.1 Ảnh hưởng của pH môi trường nuôi cấy đến hoạt độ
amylase .52
3.3.1.2 Ảnh hưởng của pH môi trường nuôi cấy đến hoạt độ
protease 53
3.3.2 Cơ chất 53
3.3.2.1 Ảnh hưởng của cơ chất lên hoạt độ amylase 53
3.3.2.2 Ảnh hưởng của cơ chất lên hoạt độ protease 54
3.3.3. Mật độ vi khuẩn .55
3.3.3.1. Ảnh hưởng của mật độ giống lên hoạt độ amylase .55
3.3.3.2. Ảnh hưởng của mật độ giống lên hoạt độ protease .56
3.3.4 Thời gian nuôi cấy 57
3.3.4.1 Khảo sát hoạt độ amylase theo thời gian nuôi cấy trên
môi trường lỏng .57
3.3.4.2 Khảo sát hoạt độ protease theo thời gian nuôi cấy trên
môi trường lỏng .58
3.4 Khảo sát sơ bộ khả năng tác dụng của chủng 8 lên môi trường
nước ao nuôi cá Tra .59
3.4.1 Khả năng tác dụng lên pH môi trường .59
3.4.2 Khả năng tác dụng lên tổng Carbon hữu cơ (TOC) theo thời
gian .60
3.4.3 Khả năng tác dụng lên tổng NH3 .62
3.4.4 Khả năng tác dụng lên tổng chất rắn lơ lửng(TSS) theo thời gian .63
3.4.5 khả năng tác dụng lên tổng lượng vi sinh vật hiếu khí .64
PHẦN 4: KẾT LUẬN VÀ ĐỀ NGHỊ .67
4.1 Kết luận .67
4.2 Đề nghị 68
TÀI LIỆU THAM KHẢO .69
PHỤ LỤC
24 trang |
Chia sẻ: maiphuongtl | Lượt xem: 2006 | Lượt tải: 0
Bạn đang xem trước 20 trang tài liệu Luận văn Khảo sát khả năng tổng hợp amylase, protease của chủng vi khuẩn phân lập từ ao nuôi cá tra, để xem tài liệu hoàn chỉnh bạn click vào nút DOWNLOAD ở trên
Kết quả và biện luận
-43-
PHẦN 3: KẾT QUẢ VÀ BIỆN LUẬN
3.1 Phân lập, làm thuần và chọn lọc
3.1.1 Phân lập và làm thuần các chủng vi khuẩn từ mẫu nước ao nuôi
cá Tra
3.1.1.1 Phân lập và làm thuần
Nước ao nuôi cá Tra được lấy mẫu, phân lập và giữ giống như ở mục 2.2.1.1,
và mục 2.2.1.2. Kết quả phân lập thu được 24 chủng vi khuẩn. Các chủng được
đánh số theo ngẫu nhiên. Với một khuẩn lạc ban đầu (do cấy trãi) chứa nhiều hơn
một chủng, thì những chủng đó được đánh thêm một số ở phần đuôi.
Tiến hành nuôi cấy các chủng vi khuẩn trên môi trường cao thịt-pepton ( như
mục 2.1.2.1).
Sau 72h tiến hành mô tả hình thái khuẩn lạc như mục 2.2.1.4.
Kết quả mô tả được trình bày trong bảng 3.1, hình 3.1, và phụ lục 5.2
Bảng 3.1: Kết quả mô tả hình thái khuẩn lạc trên môi trường Cao thịt- Pepton
Tên
Đường
kính
(mm)
Hình dạng
khuẩn lạc
Màu sắc
khuẩn lạc
Sắc tố
ngoại bào
Mặt cắt
ngang
Mép khuẩn
lạc
1 1 – 24 Tròn Trắng đục Hồng nhạt Phẳng Răng cưa
2 1 – 11 Tròn Trắng cam Cam Phẳng Răng cưa
3 0.1 – 11 Phức tạp Trắng đục _ Gồ ghề Răng cưa
5 0.5 – 6 Không đều Tím nhạt _ Phẳng Lượn sóng
6.1 1 – 21 Tròn Vàng nhạt Vàng nâu Lồi nhọn Có vành
6.2 0.5 – 15 Gấp nếp Trắng xám Vàng nâu Gồ ghề Bằng phẳng
7 0.5 – 13 Không đều Tím nhạt Tím nhạt Gồ ghề Có múi
8 1 – 20 Gấp nếp Trắng _ Gồ ghề Không đều
9 1 – 14 Tròn Trắng đục _ Lồi cong Có vành
10 0.5 – 8 Không đều Vàng nâu _ Phẳng Lượn sóng
12 0.5 – 9 Không đều Trắng đục _ Gồ ghề Không đều
Kết quả và biện luận
-44-
13 1 – 17 Tròn Vàng nâu _ Phẳng Bằng phẳng
15.1 1 – 18 Gấp nếp Trắng _ Gố ghề Bằng phẳg
15.2 1 – 8.5 Tròn Vàng nhạt _ Phẳng Bằng phẳng
16 1 – 14 Tròn Vàng nâu Nâu đen Phẳng Bằng phẳng
20 3 – 22 Tròn Vàng _ Lồi cong Có vành
21 1 – 23 Tròn Trắng vàng _ Bằng Răng cưa
23.1 0.1 – 6 Tròn Tím nhạt _ Bằng Có vành
23.3 0.1– 6.5 Tròn Tím nhạt _ Gồ ghề Răng cưa
26.1 1 – 21 Gấp nếp Vàng nâu Nâu đen Gồ ghề Có vành
26.2 1 – 17 Tròn Trắng xám Nâu đen Gồ ghề Bằng phẳng
28.1 1 – 15 Gấp nếp Trắng Nâu đen Gồ ghề Có vành
28.3 1 – 13 Tròn Trắng _ Lồi cong Có vành
28.5 1 – 18 Tròn Trắng _ Lồi nhọn Bằng phẳng
Chú thích: _ : Không cho sắc tố ngoại bào.
Hình 3.1: Hình dạng khuẩn lạc chủng 3, chủng 8, chủng 12
3.1.1.2 Nhuộm Gram
Tiến hành cấy các chủng phân lập được lên môi trường thạch nghiêng Cao
thịt- pepton, sau 18 giờ nuôi cấy thì nhuộm Gram như mục 2.2.1.3.
¾ Kết quả nhuộm Gram gồm 16 chủng cho Gram dương, 8 chủng cho gram âm.
Kết quả được mô tả cụ thể trong bảng 3.2, hình 3.2.
Kết quả và biện luận
-45-
Bảng 3.2: Đặc điểm tế bào của khuẩn lạc sau 18h nuôi cấy trên môi trường
cao thịt- Pepton
Tên Gram Hình dạng tế bào Đặc điểm
1 + Que ngắn, Rời rạc, hoặc dạng chuỗi
2 - Cấu Rời rạc
3 + Que ngắn Rời rạc
5 - Cầu Rời rạc
6.1 + Que ngắn Chuỗi
6.2 - Cầu Rời rạc, hoặc chùm
7 + Que ngắn Rời rạc, hoặc chuỗi
8 + Que ngắn Rời rạc
9 + Que ngắn Rời rạc
10 - Que dài Chuỗi
12 + Que ngắn Rời rạc
13 + Que dài Rời rạc
15.1 + Que ngắn Rời rạc
15.2 - Cầu Rời rạc
16 - Que ngắn Rời rạc
20 - Que ngắn Rời rạc, hoặc chùm
21 + Que ngắn Rời rạc
23.1 - Cầu Rời rạc
23.2 + Que ngắn Rời rạc
26.1 + Que ngắn Rời rạc
26.2 + Que dài Rời rạc
28.1 + Que dài Chuỗi
28.3 + Que dài Rời rạc
28.5 + Que ngăn Chuỗi
Chú thích: + : Gram dương ; - : Gram âm
Kết quả và biện luận
-46-
Hình 3.2: Hình nhuộm Gram chủng 6.2, 13, 26.1 (que ngắn) + 15.2 (cầu)
3.1.2 Định lượng khả năng tổng hợp amylase và protease của các chủng
vi khuẩn phân lập được trên môi trường thạch đĩa
Do sự đa dạng của các chủng vi khuẩn và theo mục tiêu của đề tài là chọn lọc
ra những chủng vi khuẩn có khả năng tổng hợp amylase và protease ngoại bào, nên
trong chọn lọc bước một, chúng tôi sử dụng hai môi trường thạch đĩa (một dành cho
sự tổng hợp amylase, một dành cho sự tổng hợp protease) nhằm khảo sát khả năng
tổng hợp amylase và protease.
Cụ thể như sau:
3.1.2.1 Trên môi trường tăng sinh amylase
Tiến hành nuôi cấy các chủng vi khuẩn trên môi trường thạch đĩa tăng sinh
amylase như phương pháp 2.2.4.1. Sau 48 giờ, đo đường kính vòng phân giải.
Kết quả cụ thể trong bảng 3.3, trên biểu đồ 3.1, hình 3.3, phụ lục 5.3
Bảng 3.3: Kết quả đo đường kính khuẩn lạc trên môi trường thạch đĩa tăng
sinh amylase sau 48h nuôi cấy
Chủng 1 2 6.1 6.2 7
ĐK 0.269± 0.008 0.023± 0.004 0.344± 0.008 0.348± 0.01 2.005± 0.028
Chủng 8 9 10 12 13
ĐK 1.823± 0.067 0.031± 0.009 1.757± 0.009 2.063± 0.018 0.025
Chủng 15.1 15.2 16 21 26.1
ĐK 1.288± 0.053 0.025 0.769± 0.027 0.441± 0.049 0.588± 0.018
Chủng 26.2 28.1 28.3 28.5
ĐK 0.025 0.028± 0.004 0.025 0.119± 0.009
Kết quả và biện luận
-47-
Chú thích: ĐK: Đường kính vòng phân giải (cm)
0
0.5
1
1.5
2
2.5
1 2
6.
1
6.
2 7 8 9 10 12 13
15
.1
15
.2 16 21
26
.1
26
.2
28
.1
28
.3
28
.5
Chủng vi khuẩn
Đ
ườ
ng
k
ín
h
vò
ng
p
hâ
n
gi
ải
(c
m
)
Biểu đồ 3.1: Kết quả khảo sát khả năng tổng hợp amylase ngoại bào.
Hình 3.3: Kết quả khảo sát khả năng tổng hợp amylase ngoại bào
¾ Nhận xét:
Xử lý kết quả thu được (trong phụ lục 5.4), kết quả thu được 19 chủng sinh
amylase ngoại bào, trong đó chọn ra được 5 chủng cho amylase cao (Chủng 7, 8,
10,12, 15.1).
Kết quả và biện luận
-48-
3.1.2.2 Trên môi trường tăng sinh protease
Tiến hành nuôi cấy các chủng vi khuẩn trên môi trường thạch đĩa tăng sinh
protease như phương pháp tại mục 2.2.4.2. Sau 48 giờ, đo đường kính vòng phân
giải.
Kết quả cụ thể trong bảng 3.4, biểu đồ 3.2, hình 3.4, phụ lục 5.5
Bảng 3.4: Kết quả đo đường kính khuẩn lạc trên môi trường tăng sinh protease
sau 48h nuôi cấy trên môi trường thạch đĩa
Chủng 1 2 3 5 6.1
ĐK 2.595± 0.092 2.305± 0.064 3.155± 0.042 2.595± 0.205 2.315± 0.092
Chủng 6.2 7 8 9 10
ĐK 2.4± 0.212 2.693± 0.028 3.378± 0.074 2.59± 0.057 2.722± 0.066
Chủng 12 13 15.1 16 21
ĐK 3.035± 0.099 2.285± 0.050 2.2± 0.071 2.828± 0.06 0.788± 0.032
Chủng 26.1 26.2 28.1 28.3 28.5
ĐK 2.541± 0.080 3.105± 0.078 1.418± 0.06 1.894± 0.038 1.838 ± 0.06
Chú thích: ĐK: Đường kính vòng phân giải (cm)
0
0.5
1
1.5
2
2.5
3
3.5
4
1 2 3 5 6.1 6.2 7 8 9 10 12 13 15.1 16 21 26.1 26.2 28.1 28.3 28.5
Chủng vi khuẩn
Đ
ư
ờn
g
kí
nh
v
òn
g
ph
ân
g
iả
i
(c
m
)
Biểu đồ 3.2: Kết quả khảo sát khả năng tổng hợp protease ngoại bào
Kết quả và biện luận
-49-
Hình 3.4: Kết quả khảo sát khả năng tổng hợp protease ngoại bào
¾ Nhận xét: Xử lý kết quả thu được (trong phụ lục 5.6), kết quả thu được 20
chủng sinh protease, trong đó chọn ra được 5 chủng cho protease cao (chủng 3, 8,
12, 16, 26.2).
3.1.3 Khảo sát khả năng tổng hợp amylase và protease của một số chủng
cho hoạt tính cao trên môi trường lỏng
Do các chủng vi khuẩn được phân lập từ môi trường nước. Chúng tôi quyết
định khảo sát khả năng tổng hợp amylase và protease của một số chủng theo
phương pháp nuôi cấy bề sâu trên hai loại môi trường lỏng riêng biệt (một dành cho
sự tổng hợp amylase, một dành cho sự tổng hợp protease). Cụ thể như sau:
3.1.3.1 Khả năng tổng hợp amylase của các chủng 7, 8, 10, 12, 15.1 trên môi
trường tăng sinh amylase
Nuôi cấy các chủng 7, 8, 10, 12, 15.1 theo phương pháp nuôi cấy bề sâu (như
mục 2.2.7.2) trên môi trường tăng sinh tổng hợp amylase (như mục 2.1.2.4) với
mật độ giống đạt 107 tế bào/ml môi trường nuôi cấy. Khảo sát hoạt độ amylase theo
các mốc 72h, 84h, 96h. (xác định hoạt độ amylase theo Heinkel- mục 2.2.6)
Kết quả cụ thể được trình bày trong bảng 3.5, biểu đồ 3.3, phụ lục 5.7
Kết quả và biện luận
-50-
Bảng 3.5: Kết quả hoạt độ amylase của một số chủng vi khuẩn (7, 8, 10, 12,
15.1) nuôi cấy trên môi trường lỏng
Thời gian
Chủng
72h 84h 96h
7 0.353± 0.014 0.659± 0.012 0.467± 0.013
8 0.813± 0.027 1.718± 0.016 1.132± 0.032
10 0.319± 0.013 0.600± 0.005 0.423± 0.012
12 0.776± 0.023 1.445± 0.011 1.018± 0.029
15.1 0.110± 0.004 0.207± 0.002 0.146± 0.004
0.000
0.200
0.400
0.600
0.800
1.000
1.200
1.400
1.600
1.800
2.000
Chủng 7 Chủng 8 Chủng 10 Chủng 12 Chủng 15.1
Chủng vi khuẩn
H
oạ
t đ
ộ
(U
I/
m
l)
Biểu đồ 3.3: Kết quả khảo sát khả năng tổng hợp amylase của một số chủng
vi khuẩn (7, 8, 10, 12, 15.1) nuôi cấy trên môi trường lỏng
¾ Nhận xét: Xử lý kết quả thu được (trong phụ lục 5.8) cho thấy chủng 8 cho
hoạt độ amylase cao nhất. Chúng tôi quyết định chọn chủng 8 để định danh , và
nghiên cứu sâu hơn về các yếu tố ảnh hưởng đến hoạt độ amylase của chủng này.
3.1.3.2 Khả năng tổng hợp protease của các chủng 3, 8, 12, 16, 26.2 trên
môi trường tăng sinh protease
Nuôi cấy các chủng 3, 8, 12, 16, 26.2 theo phương pháp nuôi cấy bề sâu (như
mục 2.2.7.2) trên môi trường tăng sinh tổng hợp protease (như mục 2.1.2.5), với
mật độ giống đạt 107 tế bào/ml môi trường nuôi cấy.
Khảo sát hoạt độ protease theo các mốc thời gian: 60h, 72h, 84h, 96h (xác định
hoạt độ protease theo Anson – mục 2.2.5)
Kết quả và biện luận
-51-
Kết quả cụ thể được trình bày trong bảng 3.6, biểu đồ 3.4, phụ lục 5.9
Bảng 3.6: Kết quả hoạt độ protease của một số chủng vi khuẩn ( 3, 8, 12,
16, 26.2) nuôi cấy trên môi trường lỏng
Thời gian
Chủng
60h 72h 84h 96h
3 0.177± 0.009 0.502± 0.012 0.362± 0.017 0.182± 0.018
8 0.370± 0.009 1.188± 0.013 1.014± 0.013 0.573± 0.020
12 0.386± 0.018 0.841± 0.007 0.897± 0.028 0.532± 0.007
16 0.145± 0.012 0.212± 0.009 0.156± 0.017 0.111± 0.014
26.2 0.263± 0.021 0.378± 0.011 0.257± 0.009 0.191± 0.014
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
Chủng 3 Chủng 8 Chủng 12 Chủng 16 Chủng 26.2
Chủng vi khuẩn
H
oạ
t đ
ộ
(U
I/
m
l)
Biểu đồ 3.4: Kết quả khảo sát khả năng tổng hợp protease của một số
chủng ( 3, 8, 12, 16, 26.2) nuôi cấy trên môi trường lỏng
¾ Nhận xét:
Xử lý thống kê số liệu (trong phụ lục 5.10) cho thấy chủng 8 cho hoạt độ
protease cao nhất. Chúng tôi quyết định chọn chủng 8 để định danh , và nghiên cứu
sâu hơn về các yếu tố ảnh hưởng đến hoạt độ protease của chủng này.
3.2 Định danh vi khuẩn:
Tiến hành cấy chuyền chủng 8, và gửi định danh (mục 2.2.10).
¾ Kết quả định danh chủng 8: Bacillus subtilis. (trong phụ lục 5.11)
Kết quả và biện luận
-52-
3.3 Khảo sát một số yếu tố ảnh hưởng đến hoạt độ amylase, protease của
Chủng 8 (Bacillus subtilis) khi nuôi cấy trên môi trường lỏng:
Do chủng 8 được phân lập từ nước, và nhằm mục đích tìm ra môi trường lỏng
tăng sinh tối ưu cho chủng 8, thử nghiệm sơ bộ chủng 8 vào môi trường nước ao
nuôi cá Tra. Chúng tôi quyết định khảo sát một số yếu tố ảnh hưởng đến hoạt độ
amylase và protease của chủng 8 (như pH môi trường, nồng độ cơ chất trong môi
trường, và mật độ giống nuôi cấy) khi tiến hành nuôi cấy bề sâu trên hai môi trường
nuôi cấy riêng biệt (một dành cho sự tăng sinh tổng hợp amylase, một dành cho sự
tăng sinh tổng hợp protease). Xác định hoạt độ amylase theo Heinkel (mục 2.2.6),
và xác định hoạt độ protease theo Anson (mục 2.2.5). Cụ thể như sau:
3.3.1 pH:
3.3.1.1 Ảnh hưởng của pH môi trường nuôi cấy đến hoạt độ amylase
Nuôi cấy chủng 8 theo phương pháp nuôi cấy bề sâu (2.2.7.2) trên môi trường
nuôi cấy dành cho sự tổng hợp amylase (tại mục 2.1.2.6), với mật độ giống nuôi cấy
đạt 107 (tế bào/ml môi trường nuôi cấy), và có sự điều chỉnh độ pH môi trường nuôi
cấy theo dãy pH : 4.5, 5, 5.5, 6, 6.5, 7.
Khảo sát hoạt độ amylase tại các mốc thời gian: 72h, 84h, 96h.
Kết quả được mô tả cụ thể tại bảng 3.7, phụ lục 5.12
Bảng 3.7 : Kết quả hoạt độ amylase của chủng 8 theo pH môi trường nuôi cấy
Thời gian
pH
72h 84h 96h
4.5 0.602± 0.016 1.118± 0.009 0.788± 0.022
5 0.612± 0.024 1.149± 0.009 0.809± 0.023
5.5 0.854± 0.033 1.603± 0.014 1.125± 0.025
6 0.996± 0.022 1.837± 0.015 1.285± 0.028
6.5 0.622± 0.013 1.166± 0.009 0.821± 0.023
7 0.402± 0.016 0.754± 0.008 0.531± 0.010
¾ Nhận xét:
Kết quả và biện luận
-53-
Xử lý kết quả thu được (tại phụ lục 5.13) cho thấy: Tại môi trường có pH 6,
chủng 8 cho amylase với hoạt độ cao nhất (ở thời điểm 84h nuôi cấy). Chúng tôi
quyết định chọn pH 6 làm pH môi trường tăng sinh amylase.
3.3.1.2 Ảnh hưởng của pH môi trường nuôi cấy đến hoạt độ protease
Tiến hành nuôi cấy chủng 8 theo phương pháp nuôi cấy bề sâu (2.2.7.2) trên
môi trường nuôi cấy dành cho sự tăng sinh tổng hợp protease (tại mục 2.1.2.7), với
mật độ giống nuôi cấy đạt 107 (tế bào/ml môi trường nuôi cấy), và có sự điều chỉnh
độ pH môi trường nuôi cấy theo dãy pH: 6, 6.5, 7, 7.5, 8.
Khảo sát hoạt độ protease tại các mốc thời gian: 60h, 72h, 84h, 96h.
Kết quả được mô tả cụ thể tại bảng 3.8, phụ lục 5.14
Bảng 3.8 : Kết quả hoạt độ protease của chủng 8 theo pH môi trường nuôi cấy
Thời gian
pH
60h 72h 84h 96h
6 0.514± 0.010 1.506± 0.019 1.312± 0.021 0.683± 0.023
6.5 0.631± 0.021 1.626± 0.008 1.386± 0.033 0.875± 0.008
7 0.367± 0.024 1.326± 0.064 1.172± 0.008 0.567± 0.007
7.5 0.253± 0.007 1.142± 0.024 0.844± 0.020 0.429± 0.017
8 0.174± 0.015 1.025± 0.008 0.669± 0.003 0.353± 0.035
¾ Nhận xét:
Xử lý kết quả thu được (tại phụ lục 5.15) cho thấy: Tại môi trường có pH 6.5,
chủng 8 cho protease với hoạt độ cao nhất (ở thời điểm 72h nuôi cấy). Chúng tôi
quyết định chọn pH 6.5 làm pH cho môi trường tăng sinh protease.
3.3.2 Cơ chất:
3.3.2.1 Ảnh hưởng của nồng độ cơ chất lên hoạt độ amylase
Tiến hành nuôi cấy chủng 8 theo phương pháp nuôi cấy bề sâu (2.2.7.2) trên
môi trường nuôi cấy dành cho sự tăng sinh tổng hợp amylase (tại mục 2.1.2.6), với
mật độ giống nuôi cấy đạt 107 (tế bào/ml môi trường nuôi cấy), và có sự điều chỉnh
độ pH môi trường nuôi cấy về pH 6. Và điều chỉnh nồng độ cơ chất (tinh bột) theo
Kết quả và biện luận
-54-
dãy: 0.0001, 0.001, 0.002, 0.003, 0.004, 0.005 (g/ml môi trường nuôi cấy) hay
0.01%, 0.1%, 0.2%, 0.3%, 0.4%, 0.5%.
Khảo sát hoạt độ amylase tại các mốc thời gian: 72h, 84h, 96h.
Kết quả được mô tả cụ thể trong bảng 3.9, phụ lục 5.16
Bảng3.9 : Kết quả hoạt độ amylase của chủng 8 theo nồng độ cơ chất trong
môi trường nuôi cấy
Thời gian
NĐCC
72h 84h 96h
0.0001 1.002± 0.026 1.870± 0.012 1.316± 0.017
0.001 1.031± 0.017 1.906± 0.010 1.334± 0.029
0.002 0.982± 0.024 1.851± 0.016 1.304± 0.030
0.003 0.970± 0.028 1.815± 0.020 1.277± 0.046
0.004 0.933± 0.022 1.750± 0.023 1.240± 0.026
0.005 0.806± 0.025 1.516± 0.024 1.071± 0.021
Chú thích: NĐCC: Nồng độ cơ chất (g/ml)
¾ Nhận xét:
Xử lý các kết quả thu được (tại phụ lục 5.17) cho thấy: Tại môi trường có nồng
độ tinh bột 0.001g/ml hay 0.1%, chủng 8 cho amylase với hoạt độ cao nhất (ở thời
điểm 84h nuôi cấy). Chúng tôi quyết định chọn nồng độ này làm nồng độ cho môi
trường tăng sinh amylase.
3.3.2.2 Ảnh hưởng của nồng độ cơ chất lên hoạt độ protease
Tiến hành nuôi cấy chủng 8 theo phương pháp nuôi cấy bề sâu (2.2.7.2) trên
môi trường nuôi cấy dành cho sự tăng sinh tổng hợp protease (tại mục 2.1.2.7), với
mật độ giống nuôi cấy đạt 107 (tế bào/ml môi trường nuôi cấy), và có sự điều chỉnh
độ pH môi trường nuôi cấy về pH 6.5. Và điều chỉnh nồng độ cơ chất (casein) theo
dãy: 0.005, 0.0075, 0.01, 0.0125, 0.015, 0.0175, 0.02 (g/ml môi trường nuôi cấy)
hay 0.5%, 0.75%, 1%, 1.25%, 1.5%, 1.75%, 2%.
Khảo sát hoạt độ protease tại các mốc thời gian là: 60h, 72h, 84h, 96h.
Kết quả được mô tả cụ thể trong bảng 3.10, phụ lục 5.18
Kết quả và biện luận
-55-
Bảng 3.10: Kết quả hoạt độ protease của chủng 8 theo nồng độ cơ chất trong
môi trường nuôi cấy
Thời gian
NĐCC
60h 72h 84h 96h
0.005 0.413± 0.019 1.459± 0.017 1.019± 0.019 0.570± 0.017
0.0075 0.406± 0.023 1.538± 0.010 1.023± 0.012 0.569± 0.015
0.01 0.390± 0.013 1.563± 0.012 1.442± 0.021 0.663± 0.018
0.0125 0.649± 0.017 1.677± 0.009 1.473± 0.016 0.855± 0.009
0.015 0.309± 0.033 1.510± 0.009 1.414± 0.012 0.885± 0.012
0.0175 0.381± 0.014 1.428± 0.012 1.289± 0.050 0.943± 0.011
0.02 0.325± 0.020 1.267± 0.012 1.119± 0.015 0.898± 0.012
Chú thích: NĐCC: Nồng độ cơ chất (g/ml)
¾ Nhận xét:
Xử lý các kết quả thu được (tại phụ lục 5.19) cho thấy: Tại môi trường có nồng
độ cơ chất là 0.0125g/ml hay 1.25% , chủng 8 cho protease với hoạt độ cao nhất (ở
thời điểm 72h nuôi cấy). Chúng tôi quyết định chọn nồng độ này làm nồng độ cơ
chất cho môi trường tăng sinh protease.
3.3.3. Mật độ vi khuẩn:
3.3.3.1. Ảnh hưởng của mật độ giống lên hoạt độ amylase:
Tiến hành nuôi cấy chủng 8 theo phương pháp nuôi cấy bề sâu (2.2.7.2) trên
môi trường nuôi cấy dành cho sự tăng sinh tổng hợp amylase (tại mục 2.1.2.6), và
có sự điều chỉnh độ pH môi trường nuôi cấy về pH 6, nồng độ cơ chất trong môi
trường là 0.001g/ml môi trường nuôi cấy . Và điều chỉnh đạt mật độ giống nuôi cấy
theo dãy: 0.5*107 , 1*107 , 2*107 , 3*107 , 4*107 (tế bào/ml môi trường nuôi cấy).
Khảo sát hoạt độ amylase tại các mốc thời gian: 72h, 84h, 96h.
Kết quả được mô tả cụ thể trong bảng 3.11, phụ lục 5.20
Bảng 3.11: Kết quả hoạt độ amylase của chủng 8 theo mật độ giống nuôi cấy
trên môi trường lỏng
Kết quả và biện luận
-56-
Thời gian
MĐG
72h 84h 96h
0.5*107 0.600± 0.025 1.146± 0.028 0.782± 0.031
1*107 1.063± 0.030 1.966± 0.041 1.329± 0.033
2*107 1.086± 0.049 2.096± 0.026 1.479± 0.034
3*107 0.549± 0.026 1.067± 0.038 0.731± 0.026
4*107 0.459± 0.016 0.885± 0.014 0.650± 0.029
Chú thích: MĐG: Mật độ giống (tế bào/ml)
¾ Nhận xét: Kết quả xử lý số liệu (tại phụ lục 5.21) cho thấy: Tại môi trường
có mật độ giống nuôi cấy là 2*107 (tế bào/ml môi trường nuôi cấy), chủng 8 cho
amylase với hoạt độ cao nhất (ở thời điểm 84h nuôi cấy). Chúng tôi quyết định chọn
mật độ nuôi cấy này cho mật độ nuôi cấy trong môi trường tăng sinh amylase.
3.3.3.2. Ảnh hưởng của mật độ giống lên hoạt độ protease:
Nuôi cấy chủng 8 theo phương pháp nuôi cấy bề sâu (2.2.7.2) trên môi trường
nuôi cấy dành cho sự tăng sinh tổng hợp protease (tại mục 2.1.2.7), và có sự điều
chỉnh độ pH môi trường nuôi cấy về pH 6.5, nồng độ cơ chất trong môi trường là
0.0125g/ml . Và điều chỉnh đạt mật độ giống nuôi cấy theo dãy: 0.5*107 , 1*107 ,
2*107 , 3*107 , 4*107 (tế bào/ml môi trường nuôi cấy).
Khảo sát hoạt độ protease tại các mốc thời gian là: 60h, 72h, 84h, 96h.
Kết quả được mô tả cụ thể trong bảng 3.12, phụ lục 5.22
Bảng 3.12: Kết quả hoạt độ protease của chủng 8 theo mật độ giống nuôi cấy
trên môi trường lỏng
Thời gian
MĐG
60h 72h 84h
0.5*107 0.511± 0.014 1.083± 0.011 0.982± 0.011
1*107 0.659± 0.024 1.362± 0.013 1.240± 0.014
2*107 0.865± 0.016 1.771± 0.014 1.606± 0.018
3*107 0.716± 0.012 1.468± 0.010 1.319± 0.015
4*107 0.620± 0.018 1.283± 0.012 1.141± 0.028
Kết quả và biện luận
-57-
Chú thích: MĐG: Mật độ giống (tế bào/ml)
¾ Nhận xét:
Xử lý các kết quả thu được (tại phụ lục 5.23) cho thấy: Tại môi trường có mật
độ giống nuôi cấy là 2*107 (tế bào/ml môi trường nuôi cấy), chủng 8 cho protease
với hoạt độ cao nhất (ở thời điểm 84h nuôi cấy). Chúng tôi quyết định chọn mật độ
này cho mật độ giống nuôi cấy trong môi trường tăng sinh protease.
3.3.4 Thời gian nuôi cấy:
3.3.4.1 Khảo sát hoạt độ amylase theo thời gian nuôi cấy trên môi
trường lỏng
Tiến hành nuôi cấy chủng 8 theo phương pháp nuôi cấy bề sâu (2.2.7.2) trên
môi trường nuôi cấy dành cho sự tăng sinh tổng hợp amylase (tại mục 2.1.2.6), và
có sự điều chỉnh độ pH môi trường nuôi cấy về pH 6, nồng độ cơ chất trong môi
trường là 0.001g/ml . Và điều chỉnh mật độ giống nuôi cấy là 2*107 (tế bào/ml môi
trường nuôi cấy). (Đặt tên môi trường tăng sinh amylase này là môi trường A)
Tiến hành thu dịch enzyme thô và khảo sát hoạt độ bắt đầu từ 24 giờ cho đến
102 giờ, theo dãy các mốc thời gian cách nhau 6 giờ .
Kết quả được mô tả cụ thể trong đồ thị 3.1, phụ lục 5.24
0
0.5
1
1.5
2
2.5
24
h
30
h
36
h
42
h
48
h
54
h
60
h
66
h
72
h
78
h
84
h
90
h
96
h
10
2h
Thời gian (h)
H
oạ
t đ
ộ
(U
I/m
l)
Đồ thị 3.1: Kết quả khảo sát hoạt độ amylase theo thời gian nuôi cấy
¾ Nhận xét:
Kết quả và biện luận
-58-
Xử lý kết quả thu được (tại phụ lục 5.25) cho thấy: Hoạt độ amylase thay đổi
theo thời gian. Hoạt độ amylase tăng nhẹ trong thời điểm từ 24h đến 72h, và tại thời
điểm 84h thì chủng 8 cho hoạt độ amylase cao nhất. Vì vậy, khi bổ sung chế phẩm
của chủng 8 vào môi trường nước ao, chúng tôi quyết định chọn thời điểm 48h nuôi
tăng sinh amylase.
3.3.4.2 Khảo sát hoạt độ protease theo thời gian nuôi cấy trên môi trường
lỏng
Tiến hành nuôi cấy chủng 8 theo phương pháp nuôi cấy bề sâu (2.2.7.2) trên
môi trường nuôi cấy dành cho sự tăng sinh tổng hợp protease (tại mục 2.1.2.7), và
có sự điều chỉnh độ pH môi trường nuôi cấy về pH 6.5, nồng độ cơ chất trong môi
trường là 0.0125g/ml . Và điều chỉnh mật độ giống nuôi cấy là 2*107 (tế bào/ml
môi trường nuôi cấy). (Đặt tên môi trường tăng sinh protease này là môi trường P )
Tiến hành thu dịch enzyme thô và khảo sát hoạt độ bắt đầu khảo sát ở 24 giờ
cho đến 114h, theo các mốc thời gian cách nhau 6 giờ .
Kết quả được mô tả cụ thể trong đồ thị 3.2, phụ lục 5.26
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
1.8
2
24
h
30
h
36
h
42
h
48
h
54
h
60
h
66
h
72
h
78
h
84
h
90
h
96
h
10
2h
10
8h
11
4h
Thời gian (h)
H
oạ
t đ
ộ
(U
I/
m
l)
Đồ thị 3.2: Kết quả khảo sát hoạt độ protease theo thời gian nuôi cấy
¾ Nhận xét: Xử lý các kết quả thu được (tại phụ lục 5.27) cho thấy: Hoạt độ
protease tăng nhẹ trong thời điểm từ 24h đến 66h, và tại thời điểm 72h thì chủng 8
cho hoạt độ protease cao nhất. Vì vậy, khi bổ sung chế phẩm của chủng 8 vào môi
trường nước ao, chúng tôi quyết định chọn thời điểm 48h nuôi tăng sinh protease.
Kết quả và biện luận
-59-
3.4 Khảo sát sơ bộ khả năng tác dụng của chủng 8 lên môi trường nước
ao nuôi cá Tra:
Nhằm mục đích bước đầu tìm hiểu khả năng tác dụng của chủng 8 lên môi
trường nước ao nuôi cá Tra. Chúng tôi quyết định đưa chủng 8 vào nước ao nuôi cá
Tra (ở giai đoạn nuôi 4 tháng tuổi, được lấy mẫu theo mục 2.2.1.1 ) trên quy mô
phòng thí nghiệm. Số lượng mẫu: 15 mẫu, thể tích mẫu: 3lít /1 mẫu. Tiến hành như
sau:
- Nuôi tăng sinh chủng 8 trên hai môi trường tăng sinh riêng biệt (một dành
cho sự tổng hợp amylase, một dành cho sự tổng hợp protease) như đã khảo sát ở
mục 3.3
- Tiến hành bổ sung chủng vi khuẩn đã tăng sinh vào môi trường nước ao nuôi
cá Tra với mật độ cấy đạt 2.107 (tế bào/ml nước ao) thành các mẫu riêng biệt. Đặt
tên mẫu như sau:
Mẫu A: Là mẫu nước được cấy giống chủng 8 (chủng này đã được nuôi tăng
sinh trên môi trường A).
Mẫu P: Là mẫu nước được cấy giống chủng 8 (chủng này đã được nuôi tăng
sinh trên môi trường P)
Mẫu ĐC: Là mẫu nước đối chứng, để phát triển tự nhiên, không cấy vi
khuẩn
- Tại các mốc thời gian 0h, 24h, 48h, 72h, 96h, tiến hành thử nghiệm các chỉ
số như: pH, carbon hữu cơ tổng số, NH3 tổng số, tổng chất rắn lơ lửng, tổng vi sinh
vật hiếu khí.
Kết quả cụ thể như sau:
3.4.1 Khả năng tác dụng lên pH môi trường
Bổ sung chủng 8 đã được nuôi tăng sinh trong môi trường A và môi trường P
vào nước ao nuôi cá Tra thành các mẫu riêng biệt.
Tiến hành khảo sát pH các mẫu trên theo các mốc thời gian 0h, 24h, 48h, 72h,
96h (theo phương pháp tại mục 2.2.12).
Kết quả được mô tả cụ thể trong bảng 3.13, đồ thị 3.3
Kết quả và biện luận
-60-
Bảng 3.13 : Kết quả khảo sát tác dụng của chủng vi khuẩn lên pH của môi
trường nước ao nuôi cá Tra.
Mẫu 0h 24h 48h 72h 96h
Mẫu Đối chứng 6.85 7.51 7.80 7.52 7.41
Mẫu A 6.73 6.98 6.94 6.80 6.55
Mẫu P 6.76 7.02 7.11 7.15 7.26
5.80
6.00
6.20
6.40
6.60
6.80
7.00
7.20
7.40
7.60
7.80
8.00
0h 24h 48h 72h 96h
pH
Th
ời
g
ia
n
(h
)
Mẫu
Đối
chứng
Mẫu A
Mẫu P
Đồ thị 3.3: Kết quả khảo sát tác dụng của chủng vi khuẩn lên pH môi
trường nước ao nuôi cá Tra
¾ Nhận xét: Sau 96h thử nghiệm cho thấy:
- pH của mẫu đối chứng tăng. Sự tăng pH là do hoạt động của tảo phù du
chiếm ưu thế.
- pH của mẫu A giảm . Sự giảm pH này là do hoạt động của chủng 8 chiếm ưu
thế hạn chế hoạt động của tảo phù du.
- pH của mẫu P có tăng nhưng vẫn thấp hơn mẫu đối chứng. Do chủng 8 trong
mẫu này vẫn chiếm ưu thế (tuy không bằng mẫu A).
Nhìn chung, mẫu A có độ ổn định về pH hơn hai mẫu còn lại. Khoảng pH của
ba mẫu vẫn nằm trong khoảng pH thích hợp cho hoạt động sống của cá Tra [6.0 –
8.5].
3.4.2 Khả năng tác dụng lên tổng Carbon hữu cơ (TOC) theo thời gian:
Kết quả và biện luận
-61-
Bổ sung chủng 8 đã được nuôi trong hai môi trường tăng sinh vào nước ao
nuôi cá Tra thành các mẫu riêng biệt.
Tiến hành khảo sát lượng carbon hữu cơ tổng số của các mẫu trên theo các
mốc thời gian 0h, 24h, 48h, 72h, 96h (theo phương pháp tại mục 2.2.13)
Kết quả được mô tả cụ thể trong bảng 3.14, đồ thị 3.4.
Bảng 3.14 : Kết quả khảo sát tác dụng của chủng vi khuẩn lên Carbon hữu
cơ tổng số (TOC) môi trường nước ao nuôi cá Tra
Mẫu 0h (g/l) 24h (g/l) 48h (g/l) 72h (g/l) 96h (g/l)
Mẫu Đối chứng 1.42 1.64 1.76 1.64 1.45
Mẫu A 1.57 1.45 1.34 1.21 0.98
Mẫu P 1.47 1.41 1.43 1.32 1.15
0.00
0.20
0.40
0.60
0.80
1.00
1.20
1.40
1.60
1.80
2.00
0 24h 48h 72 96h
Thời gian (h)
C
ar
bo
n
hữ
u
cơ
tổ
ng
số
(g
/l) Mẫu
Đối
chứng
Mẫu A
Mẫu P
Đồ thị 3.4 : Kết quả khảo sát tác dụng của chủng vi khuẩn lên carbon hữu cơ
tổng số (TOC) môi trường nước ao nuôi cá Tra
¾ Nhận xét: Sau 96h thử nghiệm chủng 8 cho thấy:
- Mẫu đối chứng có lượng TOC tăng lên 2.59% so với lượng TOC ban đầu. Sự
tăng TOC là do tảo phù du có khả năng đồng hóa, sử dụng CO2 tạo nên hợp chất
hữu cơ chứa carbon.
- Mẫu A có lượng TOC giảm 37.5% so với lượng TOC ban đầu. Sự giảm TOC
này là do chủng 8 chiếm ưu thế và sử dụng hợp chất hữu cơ chứa carbon làm nguồn
Kết quả và biện luận
-62-
năng lượng, đồng thời giải phóng CO2. Lượng CO2 này sẽ bị đuổi ra khỏi mẫu khi
tiến hành phân tích.
- Mẫu P có lượng TOC giảm 21.54% so với lượng TOC ban đầu. Sự giảm này
là do chủng 8 chiếm ưu thế, sử dụng các hợp chất hữu cơ chứa carbon làm nguồn
năng lượng, và giải phóng CO2 (Ít hơn mẫu A).
Nhìn chung, trong các mẫu thử nghiệm thì mẫu A có sự giảm lượng TOC sau
96h thử nghiệm nhất.
3.4.3 Khả năng tác dụng lên tổng NH3
Bổ sung chủng 8 đã được nuôi trong hai môi trường tăng sinh vào nước ao
nuôi cá Tra thành các mẫu riêng biệt. Tiến hành khảo sát lượng NH3 tổng số của các
mẫu này theo các mốc thời gian 0h, 24h, 48h, 72h, 96h (phương pháp tại mục
2.2.14). Kết quả được mô tả cụ thể trong bảng 3.15, đồ thị 3.5.
Bảng 3.15 : Kết quả khảo sát tác dụng của chủng vi khuẩn lên tổng NH3
môi trường nước ao nuôi cá Tra
Mẫu 0 (mg/l) 24h (mg/l) 48h (mg/l) 72h (mg/l) 96h (mg/l)
Đối chứng 0.16 0.19 0.19 0.18 0.16
Mẫu A 0.17 0.15 0.13 0.11 0.11
Mẫu P 0.23 0.17 0.13 0.11 0.10
0.00
0.05
0.10
0.15
0.20
0.25
0h 24h 48h 72h 96h
Thời gian (h)
T
ổn
g
N
H
3
(m
g/
l)
Mẫu
Đối
chứng
Mẫu A
Mẫu P
Đồ thị 3.5: Kết quả khảo sát tác dụng của chủng vi khuẩn lên tổng NH3 môi
trường nước ao nuôi cá Tra
Kết quả và biện luận
-63-
¾ Nhận xét:
Sau 96h thử nghiệm chủng NH3 cho thấy:
- Mẫu đối chứng có lượng tổng NH3 không thay đổi sau 96h.
- Mẫu A có lượng tổng NH3 giảm 36.78% so với lượng tổng NH3 ban đầu. Sự
giảm này là do chủng 8 chiếm ưu thế đã sử dụng các hợp chất hữu cơ có chứa nitơ
thành dạng sinh khối của chủng 8. Hoạt động này làm hạn chế tạo NH3 ra môi
trường.
- Mẫu P có lượng tổng NH3 giảm 56.52% so với lượng tổng NH3 ban đầu. Sự
giảm này là do chủng 8 chiếm ưu thế, sử dụng các hợp chất hữu cơ có chứa nitơ
thành dạng sinh khối cho chủng 8 và hạn chế tạo NH3 ra môi trường (Hoạt động này
diễn ra mạnh hơn mẫu A).
Nhìn chung, mẫu P có sự giảm lượng tổng NH3 sau 96h thử nghiệm nhất.
3.4.4 Khả năng tác dụng lên tổng chất rắn lơ lửng(TSS) theo thời gian:
Cấy chủng 8 đã được nuôi trong hai môi trường tăng sinh vào nước ao nuôi cá
Tra thành các mẫu riêng biệt.
Tiến hành khảo sát lượng tổng chất rắn lơ lửng (TSS) của các mẫu trên theo
các mốc thời gian 0h, 24h, 48h, 72h, 96h (theo phương pháp tại mục 2.2.15)Tiến
hành khảo sát như mục 2.2.15, sử dụng phương pháp như mục 2.2.21.
Kết quả được mô tả cụ thể trong bảng 3.16, đồ thị 3.6.
Bảng 3.16: Kết quả khảo sát tác dụng của chủng vi khuẩn lên tổng chất rắn
lơ lửng môi trường nước ao nuôi cá Tra
Mẫu 0h (mg/l) 24h (mg/l) 48h (mg/l) 72h (mg/l) 96h (mg/l)
Mẫu Đối chứng 195 179 168 162 158
Mẫu A 207 187 147 120 105
Mẫu P 211 185 166 140 132
Kết quả và biện luận
-64-
0
50
100
150
200
250
0h 24h 48h 72h 96h
Thời gian (h)
Tổ
ng
c
hấ
t r
ắn
lơ
lử
ng
(m
g/
l) Mẫu
Đối
chứng
Mẫu A
Mẫu P
Đồ thị 3.6: Kết quả khảo sát tác dụng của chủng vi khuẩn lên tổng chất rắn
lơ lửng môi trường nước ao nuôi cá Tra
¾ Nhận xét:
Sau 96h thử nghiệm chủng 8 cho thấy:
- Mẫu đối chứng có lượng TSS giảm 18.97% so với lượng TSS ban đầu.
- Mẫu A có lượng TSS giảm 49,28% so với lượng TSS ban đầu.
- Mẫu P có lượng TSS giảm 37.14% so với lượng TSS ban đầu.
Nguyên nhân giảm này là do: chất hữu cơ trong mẫu giảm dần về khối lượng
(do năng lượng của chúng được giải phóng, do tạo thành các chất khí thoát vào
không khí) và chuyển thành sinh khối vi sinh vật và các sinh vật khác theo thời
gian.
Nhìn chung, mẫu A có sự giảm lượng TSS nhất.
3.4.5 khả năng tác dụng lên tổng lượng vi sinh vật hiếu khí:
Cấy chủng 8 đã được nuôi trong hai môi trường tăng sinh vào nước ao nuôi cá
Tra thành các mẫu riêng biệt.
Tiến hành khảo sát lượng tổng vi sinh vật hiếu khí của các mẫu trên theo các
mốc thời gian 0h, 24h, 48h, 72h, 96h (theo phương pháp tại mục 2.2.16)
Kết quả được mô tả cụ thể trong bảng 3.17, đồ thị 3.7
Kết quả và biện luận
-65-
Bảng 3.17: Kết quả khảo sát tác dụng của chủng vi khuẩn lên tổng lượng Vi sinh
vật hiếu khí
Mẫu
0h
CFU/ml
24h
CFU/ml
48h
CFU/ml
72h
CFU/ml
96h
CFU/ml
Mẫu Đối chứng 1*104 2.5*105 1*105 3*104 1.6*104
Mẫu A 2*107 4.1*109 6.5*109 1.4*108 2.2*106
Mẫu P 2*107 5.6*109 4.3*109 1.6*108 2.8*106
-1000000000
0
1000000000
2000000000
3000000000
4000000000
5000000000
6000000000
7000000000
0h 24h 48h 72h 96h
Thời gian (h)
Lư
ợn
g
tế
b
ào
v
i s
in
h
vậ
t
(C
FU
/m
l)
Mẫu
Đối
chứng
Mẫu A
Mẫu P
Đồ thị 3.7: Kết quả khảo sát tác dụng của chủng vi khuẩn lên tổng lượng Vi
sinh vật hiếu khí
¾ Nhận xét:
Sau 96h thử nghiệm chủng 8 cho thấy:
Trong các mẫu thử nghiệm, tổng lượng vi sinh của mẫu A và mẫu P giảm
xuống rõ rệt sau 96h thử nghiệm. Do đó, nếu chọn chủng vi khuẩn 8 để xử lý môi
trường nước thì cần bổ sung chủng giống tại thời điểm sau khi bắt đầu thử nghiệm
khoảng 96h.
Kết quả và biện luận
-66-
Nhìn chung, mô hình xử lý ô nhiễm hữu cơ bằng Vi sinh có tiềm năng ứng
dụng rất cao trong việc hạn chế thay nước cho các ao nuôi tôm, cá thương phẩm.
Các vi khuẩn sử dụng carbon hữu cơ như là một nguồn năng lượng để kết hợp với
nitơ sinh tổng hợp protein tạo ra tế bào mới.
Trong đề tài này, chúng tôi thử nghiệm tác dụng của vi khuẩn (chủng 8 - có
nguồn gốc phân lập như mục 3.1) lên môi trường nước ao nuôi cá Tra. Kết quả cho
thấy: Chủng 8 phân hủy chất hữu cơ trong nước ao nuôi cá, chuyển hóa thành dạng
sinh khối của chủng 8, và đồng thời làm giảm độc tố trong môi trường nước (như
NH3 ), giúp ổn định pH của nước, giảm lượng chất rắn lơ lửng. Theo một số nguồn
tài liệu cho thấy: Việc kết hợp sử dụng chủng 8 với hệ thống ao xử lý nước thải bên
cạnh ao nuôi thương phẩm, định kỳ loại bỏ sinh khối của vi khuẩn ra khỏi môi
trường nước của ao xử lý, và nước ao đã qua xử lý có thể được đưa lại vào ao nuôi
thương phẩm. Trong nuôi trồng thủy sản, việc đảm bảo tính ổn định của môi trường
nuôi được xem là yếu tố quan trọng hàng đầu. Thử nghiệm trong đề tài này cho
thấy: Đây là một giải pháp xử lý nước ao nuôi thủy sản có tiềm năng ứng dụng rất
cao, cần được nghiên cứu sâu hơn.