TÓM LƯỢC
Phân tích RAPD 28 dòng măng cụt ở tỉnh Bến Tre với 7 mồi (A13, SO15, SN20, SN06, A02, OPS05, OPN09), kết quả khuếch đại được 51 băng, trong đó có 38 băng đa hình chiếm tỷ lệ 74,51%. Mồi SN20 cho kết quả khuếch đại và tỷ lệ băng đa hình cao nhất. Từ kết quả phân tích RAPD sử dụng phần mềm Biodiversity professional phân tích tương quan di truyền và vẽ giản đồ phân nhóm dòng măng cụt ở tỉnh Bến Tre. Qua phân tích di truyền cho thấy dòng măng cụt ở Bến Tre có tương quan di truyền cao với hệ số tương quan di truyền dao động từ 63,77 ñến 100, và hệ số tương quan di truyền trung bình là 85,07.
Từ khóa: RAPD, Dấu phân tử, ña hình, dòng măng cụt, đa dạng di truyền, Phảhệ, Phổ diện DNA.
Keywords: RAPD (Randomly Amplified Polymorphic DNA), Marker, polymorphism Varieties of mangosteen, Genetic diversity, Phylogenetic, DNA profile.
MỤC LỤC
LỜI CẢM ƠN
MỤC LỤC
DANH SÁCH BẢNG
DANH SÁCH HÌNH
TỪ VIẾT TẮT
TÓM LƯỢC
CHƯƠNG 1. ĐẶT VẤN ĐỀ
CHƯƠNG 2. LƯỢC KHẢO TÀI LIỆU
2.1 Những thông tin cơ bản về cây măng cụt
2.1.1 Phân loại
2.1.2 Đặc ñiểm thực vật học
2.1.3 Vai trò và ứng dụng của cây măng cụt trong cuộc sống
2.1.4 Nguồn gốc và hiện trạng cây măng cụt ở Việt Nam
2.2 Kỹ thuật phân tử và một số nghiên cứu liên quan về cây măng cụt
2.2.1 Kỹ thuật PCR
2.2.2 Dấu phân tử RAPD
CHƯƠNG 3. PHƯƠNG TIỆN VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
3.1 Phương tiện nghiên cứu
3.1.1 Thời gian và địa điểm nghiên cứu
3.1.2 Dụng cụ, thiết bị
3.1.3 Nguyên vật liệu
3.1.4 Hóa chất
3.2 Phương pháp nghiên cứu
3.2.1 Ly trích DNA
3.2.2 Phản ứng PCR
3.2.3 Phân tích kết quả
CHƯƠNG 4. KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN
4.1 Trích DNA
4.2 Kết quả phản ứng PCR với mồi RAPD
CHƯƠNG 5. KẾT LUẬN VÀ ĐỀ NGHỊ
5.1 Kết luận
5.2 Đề nghị
TÀI LIỆU THAM KHẢO.
PHỤ LỤC
43 trang |
Chia sẻ: maiphuongtl | Lượt xem: 1946 | Lượt tải: 0
Bạn đang xem trước 20 trang tài liệu Luận văn Sử dụng phương pháp RAPD nghiên cứu tính đồng dạng di truyên dòng măng cụt ở Bên Tre, để xem tài liệu hoàn chỉnh bạn click vào nút DOWNLOAD ở trên
BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ KHOA KHOA HỌC
LUẬN VĂN TỐT NGHIỆP ĐẠI HỌC CHUYÊN NGÀNH CÔNG NGHỆ SINH HỌC
Đề tài
SỬ DỤNG PHƯƠNG PHÁP RAPD NGHIÊN CỨU TÍNH ĐỒNG DẠNG DI TRUYỀN DÒNG MĂNG CỤT Ở BẾN TRE
CÁN BỘ HƯỚNG DẪN SINH VIÊN THỰC HIỆN Ts. TRẦN NHÂN DŨNG TRỊNH MINH CHÂU
Viện NC & PT Công nghệ Sinh học MSSV: 3042672
Lớp: Công nghệ Sinh học K.30
Năm 2008
LỜI CẢM ƠN
MỤC LỤC
LỜI CẢM ƠN ................................................................................................ Trang 1
MỤC LỤC................................................................................................................ 2
DANH SÁCH BẢNG .............................................................................................. 4
DANH SÁCH HÌNH................................................................................................ 5
TỪ VIẾT TẮT ......................................................................................................... 6
TÓM LƯỢC ............................................................................................................. 7
CHƯƠNG 1. ĐẶT VẤN ĐỀ ................................................................................... 8
CHƯƠNG 2. LƯỢC KHẢO TÀI LIỆU .................................................................. 9
2.1 Những thông tin cơ bản về cây măng cụt .................................................. 9
2.1.1 Phân loại ............................................................................................... 9
2.1.2 Đặc điểm thực vật học ......................................................................... 9
2.1.3 Vai trò và ứng dụng của cây măng cụt trong cuộc sống .................... 11
2.1.4 Nguồn gốc và hiện trạng cây măng cụt ở Việt Nam.......................... 11
2.2 Kỹ thuật phân tử và một số nghiên cứu liên quan về cây măng cụt ........ 12
2.2.1 Kỹ thuật PCR ..................................................................................... 13
2.2.2 Dấu phân tử RAPD ............................................................................ 15
CHƯƠNG 3. PHƯƠNG TIỆN VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU ................ 17
3.1 Phương tiện nghiên cứu ........................................................................... 17
3.1.1 Thời gian và địa điểm nghiên cứu ..................................................... 17
3.1.2 Dụng cụ, thiết bị................................................................................. 17
3.1.3 Nguyên vật liệu .................................................................................. 17
3.1.4 Hóa chất ............................................................................................. 17
3.2 Phương pháp nghiên cứu ......................................................................... 18
3.2.1 Ly trích DNA ..................................................................................... 18
3.2.2 Phản ứng PCR.................................................................................... 18
3.2.3 Phân tích kết quả ................................................................................ 19
CHƯƠNG 4. KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN ......................................................... 20
4.1 Trích DNA .............................................................................................. 20
4.2 Kết quả phản ứng PCR với mồi RAPD .................................................. 21
CHƯƠNG 5. KẾT LUẬN VÀ ĐỀ NGHỊ ............................................................. 26
5.1 Kết luận .................................................................................................... 26
5.2 Đề nghị..................................................................................................... 26
TÀI LIỆU THAM KHẢO...................................................................................... 27
PHỤ LỤC ............................................................................................................... 30
DANH SÁCH BẢNG
Bảng 1. Các mồi RAPD sử dụng trong phân tích đa hình. .......................... Trang 19
Bảng 2. Kết quả đo nồng độ DNA (trích phụ lục) ................................................. 21
Bảng 3. Kết quả RAPD dòng măng cụt ở Bến Tre (trích phụ lục) ........................ 22
Bảng 4. Các mồi RAPD được sử dụng trong phân tích tương quan di truyền ...... 23
Bảng 5. Kết quả phân tích tương quan di truyền dòng măng cụt ở Bến Tre (trích phụ lục)................................................................................................................... 25
DANH SÁCH HÌNH
Hình 1. Kết quả kiểm tra nhanh DNA sau khi trích..................................... Trang 21
Hình 2. Kết quả PCR mồi A13 các mẫu từ 1 10 ................................................. 23
Hình 3. Kết quả PCR mồi OPS05 các mẫu từ 1 13............................................. 24
Hình 4. Kết quả PCR mồi OPN09 các mẫu từ 1 14 ............................................ 24
Hình 5. Giản đồ phân nhóm dòng măng cụt ở Bến Tre ......................................... 26
TỪ VIẾT TẮT
bp
Base pair
DNA
Deoxyribonucleotide
ĐBSCL
Đồng bằng sông Cửu Long
ĐNB
Đông Nam Bộ
PCR
Polymerase Chain Reaction
QTL
Qantitative Trait Loci
RAPD
Random Amplified Polymorphic DNA
RFLP
Restriction Fragment Length
Polymorphism
BiH2O
Nước cất hai lần
EB
Extraction buffer
EDTA
Ethylenediamine-tetraacetic acid
OD
Optical density
RNase
Ribonuclease, enzime phân hủy RNA
rpm
Round per minute, vòng/ phút
SDS
Sodium dodecyl sulphate
TE
Tris-EDTA
TÓM LƯỢC
Phân tích RAPD 28 dòng măng cụt ở tỉnh Bến Tre với 7 mồi (A13, SO15, SN20, SN06, A02, OPS05, OPN09), kết quả khuếch đại được 51 băng, trong đó có 38 băng đa hình chiếm tỷ lệ 74,51%. Mồi SN20 cho kết quả khuếch đại và tỷ lệ băng đa hình cao nhất. Từ kết quả phân tích RAPD sử dụng phần mềm Biodiversity professional phân tích tương quan di truyền và vẽ giản đồ phân nhóm dòng măng cụt ở tỉnh Bến Tre. Qua phân tích di truyền cho thấy dòng măng cụt ở Bến Tre có tương quan di truyền cao với hệ số tương quan di truyền dao động từ 63,77 đến 100, và hệ số tương quan di truyền trung bình là 85,07.
Từ khóa: RAPD, Dấu phân tử, đa hình, dòng măng cụt, đa dạng di truyền, Phả
hệ, Phổ diện DNA.
Keywords: RAPD (Randomly Amplified Polymorphic DNA), Marker,
polymorphism
Varieties
of
mangosteen,
Genetic
diversity,
Phylogenetic,
DNA
profile.
CHƯƠNG 1
ĐẶT VẤN ĐỀ
Bến Tre nổi tiếng với các loại cây đặc sản có giá trị kinh tế cao như măng cụt, sầu riêng, xoài cát Hòa Lộc, cam xoàn, bưởi da xanh, …Theo thống kê năm
2007, tỉnh Bến Tre có gần 41.000 ha trồng cây ăn trái với sản lượng khoảng
380.000 tấn mỗi năm. Trong số rất nhiều giống cây trồng, Bến Tre chọn 4 loại cây: sầu riêng, măng cụt, bưởi da xanh, cam xoàn để làm hướng phát triển chủ lực sau này. Tuy nhiên, hiện nay trong quá trình trồng nông dân ở đây đã thường chọn các giống cây từ nhiều nguồn khác nhau dựa vào cây bố mẹ có năng suất cao và sinh trưởng tốt chứ không phải giống đã được tuyển chọn từ các trung tâm sản xuất giống. Chính sự đa dạng phong phú và không ổn định về nguồn gốc của các giống cây ăn trái này đã đưa đến một vấn đề là liệu chúng có thực sự đồng đều về di truyền với nhau hay không dù tên gọi giống nhau và không phân biệt được bằng mắt thường dựa trên các đặc tính hình thái.
Đa dạng trong cấu trúc gen của các giống cây đã và đang được nghiên cứu rộng rãi nhằm giúp phân biệt được những cây là cùng loài hay khác loài hoặc có quan hệ xa gần về mặt di truyền. Trên cơ sở phương pháp PCR, Random Amplified Polymorphic DNA (RAPD) được sử dụng hiệu quả để đánh giá tương quan di truyền của giống cây.
Đề tài “Sử dụng phương pháp RAPD nghiên cứu tính đồng dạng di truyền dòng măng cụt ở Bến Tre” sử dụng kỹ thuật RAPD nhằm làm rõ được vấn đề trên sẽ giúp chúng ta ngăn chặn được những thiệt hại về mặt kinh tế do cây giống thiếu chất lượng gây ra như năng suất kém, chất lượng sản phẩm không đồng đều, khó khăn cho công tác sau thu hoạch,… đồng thời cũng giúp xác định được những giống cây đạt chất lượng làm căn cứ cho công tác chọn và sản xuất giống cây trồng đạt chất lượng và đồng nhất.
Mục tiêu đề tài: Xác định sự tương quan di truyền của dòng măng cụt ở Bến Tre dựa trên phổ diện RAPD.
CHƯƠNG 2
LƯỢC KHẢO TÀI LIỆU
2.1 Những thông tin cơ bản về cây măng cụt.
2.1.1 Phân loại
Giới: Plantae
Ngành: Magnoliophyta Lớp: Magnoliopsida Bộ: Malpighiales
Họ: Clusiaceae
Chi: Garcinia
Loài: G. mangostana
Măng cụt tên khoa học Garcinia mangostana L., thuộc họ Bứa Guttiferae là họ có tới 35 giống và hơn 400 loài phân bố ở vùng nhiệt đới (Phạm Hoàng Hộ,1970).
2.1.2 Đặc điểm thực vật học
Thân và Rễ: Cây măng cụt có kích thước trung bình, dáng đẹp, khi cây trưởng thành cao 10-25 m, với đường kính thân 0,6-0,8 m. Măng cụt ở Đồng bằng Sông Cửu Long (ĐBSCL) sau 30 năm trồng thường cao 6-8 m và tán rộng 6-10 m. Dáng cây thẳng đứng và vững chắc, tán hình chóp nón, cành từ thân đâm ra với một bán kính đồng đều. Cây tăng trưởng chậm (nhất là những năm đầu), thường mọc thẳng với tán ở trên. Vỏ thân cây măng cụt có màu nâu sẫm, thường chứa tanin, mangostin và amiliasin dùng làm dược liệu (trị tiêu chảy, kiết lị…). Mangostin là một lọai xanthin có khả năng chống lại nhiều loại nấm và vi khuẩn. Chất này có nhiều trong thân, lá và vỏ quả măng cụt, gỗ thân nặng và bền, thường làm đồ mộc và trang trí. Rễ phát triển chậm và yếu, độ rộng chỉ bằng 2/3 độ rộng của tán cây, rễ cây măng cụt lại không có hệ thống lông hút nên khả năng hấp thụ nước hạn chế (Nguyễn Thị Thanh Mai, 2005).
Lá: Lá đơn to, hình bầu dục, hơi dài, lá dày mọc đối. Phiến lá nguyên, thuôn dài, dày và có gân giữa, nỗi rõ. Lá xanh sẫm và bóng ở mặt trên, xanh vàng và mốc ở mặt dưới có 30-40 đôi đường gân song song kéo dài tới đường lá. Dưới ánh sáng mặt trời lá có màu xanh pha vàng hoặc vàng pha xanh. Lá dài 12-15 cm, rộng 7-10 cm, lá măng cụt có khả năng quang hợp rất kém (Nguyễn Thị Thanh Mai, 2005).
Hoa: Trong điều kịên thuận lợi, cây ra hoa vào năm thứ 6-7 sau khi gieo. Nếu bất lợi cây chỉ ra hoa sau 10-12 năm, thậm chí đến 15-20 năm nếu trồng ở nhiệt độ thấp (Vũ Công Hậu, 1987). Hoa thường mọc ở đầu cành. Ở miền Nam măng cụt thường ra hoa vào tháng 1-3 dương lịch và cho trái chín vào tháng 5-8 dương lịch (khoảng 104-108 ngày sau khi nở hoa). Hoa phát triển ở cành từ 2 năm trở lên, là những hoa không hoàn toàn, về hình thái là những hoa lưỡng tính, nhưng về chức năng chỉ có những hoa cái trên đó. Cũng có nhị đực mang 1-3 bao phấn (dài 5-6 mm), hoàn toàn bất thụ. Hạt chỉ phát triển được nhờ những hoa bất định (do đó, cây con trồng từ hạt hoàn toàn giống cây mẹ). Bầu noãn không có cuống, xếp thành hình tròn có 4-8 buồng. Nuốm không có vòi nhụy mang nhiều thùy, có 4-8 thùy tùy số buồng (Nguyễn Thị Thanh Mai, 2005).
Quả và hạt: Quả là quả nang còn mang đài hoa ở cuống và nuốm nhụy ở chóp quả. Vỏ quả khi non có màu xanh đọt chuối. Khi chín, vỏ đỏ dần rồi chuyển sang tím , rồi tím sẫm. Quả hình cầu, đáy phẳng, đường kính 3,5-7 cm, nặng 75-
100 g. Vỏ quả láng, dày 0,8-1cm, màu tím hay tím nâu ở mặt ngoài và tím bên trong, chứa một lọai dịch đắng màu vàng và tiết ra khi quả non bị tổn thương. Dịch trong quả gồm mangostanstrin, phytosterine và tanin, được dùng trong dược liệu. Phần thịt bên trong quả chứa 5-7 hạt phát triển. Hạt dài khoảng 2 cm, vị chua ngọt (độ brix 17-19%). Quả măng cụt thường có 2-3 hạt phát triển, phần thịt trái chứa 25-30%. Trong phần thịt trái chứa 19,8% chất khô hòa tan, 4,3% đường khử,
17,5% đường tổng số, 0,5% protein. Ngoài ra còn có lipid, chất xơ, tro, acid ascorbic và một số khóang chất như canxi, lân, kali, sắt cùng vitamin B1, B2 và C.
Phẩm chất trái có thể thay đổi do điều kiện khí hậu khác nhau (Nguyễn Thị Thanh
Mai, 2005).
2.1.3 Vai trò và ứng dụng của cây măng cụt trong cuộc sống.
Trái măng cụt thơm ngon cũng còn cống hiến nhiều vị thuốc. Từ lâu, ở Á châu, bên Ấn Độ, hệ thống khoa học đời sống ayurvedic đã kê nó vào nhiều thang thuốc cổ truyền, đặc biệt chống viêm, chữa tiêu chảy, ức chế dị ứng, làm giản phế quản trong điều trị hen suyển. Nó cũng được xem như là những thuốc chống dịch tả, bệnh lỵ, kháng vi khuẩn, kháng vi sinh vật, chống suy giảm miễn dịch. Người Thái dùng nó để chữa vết thương ngoài da. Người Mã Lai, Phi Luật Tân dùng nước sắc vỏ chữa lỵ, đau bụng, đi tiêu lỏng, bệnh vàng da. Theo Đông y, vỏ quả măng cụt có vị chua chát, tính bình, đi vào hai kinh phế và đại tràng, có công năng thu liễn, sáp trường, chi huyết, dùng trị tiêu chảy, ngộ độc thức ăn (Võ Quang Yến- 2005).
Đứng về mặt ứng dụng, măng cụt được dùng trong thuốc tẩy, thuốc đánh răng, mỹ phẩm có tính chất kháng vi sinh vật. a-mangostin có công hiệu trên Helicobacter pylori ở nồng độ 1,56 µ g/ml. a- và g-mangostin ức chế glucosyl transferase phát xuất từ trùng sâu răng Streptococcus sobrinus và collagenase do vi khuẩn viêm lợi Porphyromonas gingivalis gây chảy mũi nên được dùng trong thuốc đánh răng, có khả năng ngừa chặn sâu răng và mảng răng. Mangosten được trộn với nhiều hóa chất khác như cetyl alcool, cetyl phosphat, dimethicon, eicosen, disodium, magnesium stearat, dipropylen glycol, triethanolamin,… để làm một loại thuốc bảo vệ chống ánh nắng mặt trời. Nhờ tính chất ức chế hoạt động phosphodiesterase, ở nồng độ 50 µ g/ml trong một dung dịch 5% dimethyl sulfoxyd, nó được dùng để làm thuốc kích thích tiêu mỡ (Võ Quang Yến- 2005).
2.1.4 Nguồn gốc và hiện trạng cây măng cụt ở Việt Nam
Cây măng cụt nguồn gốc Mã Lai, Nam Dương, từ Malacca qua Moluku, ngày nay bắt gặp khắp Đông Nam Á, ở Ấn Độ, Myanmar cũng như ở Sri Lanka, Philippines, được các nhà truyền giáo đạo Gia tô di thực vào miền Nam nước ta
(Đỗ Tất Lợi-1986), rồi trồng nhiều ở các tỉnh Tây Ninh, Gia Định, Thủ Dầu Một. Hiện nay, ở nước ta măng cụt được trồng nhiều ở Đồng bằng Sông Cửu Long (ĐBSCL) và Đông Nam Bộ (ĐNB).
2.2 Kỹ thuật phân tử và các nghiên cứu liên quan về cây măng cụt
Biến dị di truyền trong những quần thể có thể được phát hiện thông qua dấu phân tử protein và DNA (Paterson et al. 1990). Dấu phân tử là cơ sở phân loại học và hình thái của cây. Những dấu phân tử thường rất được việc vì chúng có thể áp dụng một cách dễ dàng và không đòi hỏi khắc khe về kỹ thuật nhưng chúng biến đổi trong quá trình phát triển bởi yếu tố môi trường. (Bai et al. 2000). Dấu phân tử protein, còn được gọi là isoenzymes trên cơ sở đa hình các đoạn protein được phát hiện bằng điện di. Trong định danh và phân tích biến đổi số lượng gene, dấu phân tử isoenzyme bị giới hạn bởi số lượng hiện hữu các loci và sự thay đổi điện tích của protein (Murphy et al. 1996).
Dấu phân tử DNA là phương pháp nhanh và đáng tin cậy để đánh giá tương quan di truyền bộ gene của các sinh vật. (Thormann et al. 1994). Kỹ thuật RAPD (Random amplified poly-morphic DNA) (Williams et al. 1990) đã được sử dụng cho phân tích đa dạng di truyền (Hasizume et al. 1993), vẽ bản đồ gene (Ohmori et al. 1995) và phân tích QTL (Gran-dillo and Tanskley 1996) ở rất nhiều giống cây trồng. Khả năng phân tích của kỹ thuật RAPD cao hơn vài lần so với dấu phân tử protein và nó đơn giản hơn nhiều, ít phụ thuộc vào kỹ thuật hơn RFLP và các kỹ thuật tương tự khác.
Ramage et al. (2004) khảo sát tương quan di truyền giữa 37 dòng măng cụt và giữa 11 dòng của 8 loài khác thuộc chi Garcinia bằng dấu phân tử RAF (Randomly Amplified DNA Fingerprinting). Kết quả cho thấy đa dạng di truyền giữa măng cụt và các loại khác thuộc chi Garcinia, 26 (70%) dòng không phát hiện dấu phân tử khác biệt ở hơn 530 loci, 8 (22%) dòng cho khác biệt rất thấp
(0.2-1%), và 3 dòng (8%) cho kết quả thật sự khác biệt. So sánh với các loài thuộc chi Garcinia khác thì 3 nhóm măng cụt khác biệt 63-70%.
Dường như biến đổi di truyền cao thường không phổ biến đối với cây măng cụt, khi cây măng cụt được biết như là loài cây sinh sản vô tính, không phụ thuộc vào sự thụ tinh. (Koltunow et al. 1995). Những biến đổi có thể đến từ việc tích lũy những đột biến tự nhiên. Các đột biến bên trong đóng vai trò thiết yếu trong sự hình thành loài và khai hóa trong nhân giống cây trồng như chuối và cây mã đề (Buddenha-gen 1987).
Carman (2001) cho rằng sinh sản vô tính là kết quả của lai xa từ 2 bố mẹ khác nhau về tính trạng kiểu hình liên quan đến sinh sản. Theo Yaa-cob và Tindal (1995) măng cụt (G. mangostana) là con lai của G. hombrioniana và G. Malaccensis , và cũng có thể cây măng cụt đã không có nguồn gốc từ lai đơn giữa cặp bố mẹ, vì Đông Nam Á là trung tâm đa dạng của Garcinia. Thomas (1977) báo cáo sự khác biệt di truyền của G. hombrioniana và G. Malaccensis. Khả năng về sự phát triển của cây măng cụt tổ tiên đã không được truyền lại bằng lai đơn dòng, có thể dẫn đến sự khác biệt giữa các quần thể măng cụt riêng biệt tạo ra.
Sobir Roedhy Poerwanto (2007) đã sử dụng phân tích RAPD (Prabo-wo
2002; Mansyah 2002) trên 21 cây măng cụt để nghiên cứu biến dị di truyền quần thể măng cụt trên đảo Java. Tổng cộng 40 mồi RAPD đã được sử dụng và 39 mồi khuếch đại thành công các đoạn DNA từ genome cây măng cụt; trên cơ sở đó, 5 mồi (SB13, SB19, OPH12, OPH13 và OPH18) được chọn cho phân tích RAPD. Phân tích RAPD cho thấy 5 mồi khuếch đại 51 băng (trung bình 5,1 băng/ mồi) và
42 băng đa hình chiếm tỷ lể 82,4% (trung bình 8,4 băng/ mồi).
2.2.1 Kỹ thuật PCR
Polymerase Chain Reaction (PCR) được Kary Mullis và cộng sự phát minh, công bố tháng 10 năm 1985, là công nghệ được sử dụng rộng rãi và có tác động
lớn tạo bước nhảy vọt trong sinh học phân tử và kỹ thuật gen. Với công nghệ này, một trình tự DNA ban đầu có thể được nhân lên hàng tỷ bản sao chỉ trong vài giờ. Thực chất đây là phương pháp tạo dòng in vitro (không cần sự hiện diện của tế bào) nhờ vào vai trò của enzyme, khuếch đại một đoạn DNA cho trước.
Một phản ứng PCR thông thường gồm DNA mẫu, enzyme DNA polymerase chịu nhiệt (T4 DNA polymerase, Taq DNA polymerase, Vent DNA polymerase, Pfu DNA polymerase,…), cặp mồi (là các oligonucleotide), dNTPs (deoxynucleotide triphosphates), dung dịch đệm (buffer) và Mg++. Các thành phần của phản ứng được trộn đều và được đưa vào một chu trình nhiệt. Chu trình nhiệt đặt phản ứng vào một chuỗi nhiệt độ với những khoảng thời gian khác nhau. Chuỗi nhiệt độ với những khoảng thời gian khác nhau này được xem là một chu kỳ nhân gen (Zakaria Ahmed, 2006). Mỗi chu kỳ gồm 3 giai đoạn:
- Giai đoạn biến tính: nhiệt độ được lên 95o C hoặc cao hơn trong thời gian
15 giây đến 2 phút. Trong giai đoạn này 2 mạch phân tử DNA tách rời nhau.
- Giai đoạn gắn mồi: nhiệt độ được hạ thấp xuống ở khoảng từ 40-60oC để
các mồi bắt cặp với các mạch đơn DNA khuôn. Giai đoạn này khoảng 30-60 giây.
- Giai đoạn tổng hợp: quá trình tổng hợp mạch DNA mới bắt đầu khi nhiệt độ phản ứng được tăng lên đến điều kiện thuận lợi nhất cho enzyme DNA polymerase khoảng 70-72oC. Enzyme DNA polymerase xúc tác hoạt động tổng hợp gắn thêm các nucleotide vào cuối đoạn mồi ở đầu 3’OH. Thời gian cho giai đoạn tổng hợp khoảng 1-2 phút.
Một phản ứng PCR gồm nhiều chu kỳ liên tục. Sản phẩm tạo ra ở chu kỳ trước lại làm khuôn ở chu kỳ kế tiếp, số lượng bản sao DNA tạo thành tăng gấp đôi sau mỗi chu kỳ. 10 chu kỳ có thể tạo ra một ngàn bản sao từ 1 DNA mẫu; 20 chu kỳ từ một DNA mẫu cho ra hơn một triệu bản sao. Sau 20-40 chu kỳ, có thể đem các sản phẩm DNA đi phân tích kích thước, chất lượng, giải trình tự,… hoặc sử dụng vào các mục đích nghiên cứu xa hơn (Zakaria Ahmed, 2006).
2.2.2 Dấu phân tử RAPD (RAPD marker)
Kỹ thuật RAPD (Random Amplified Polymorphism DNA) do William phát minh năm 1990, Welsh và cộng sự hoàn thiện năm 1991. Dấu phân tử RAPD là những đoạn DNA được khuếch đại ngẫu nhiên từ phản ứng PCR bằng mồi đơn có trình tự ngẫu nhiên.
Nguyên tắc: Không giống phân tích PCR truyền thống, RAPD không đòi hỏi phải biết trước trình tự DNA của đối tượng nghiên cứu: những mồi với chiều dài 10 nucleotide có trình tự giống nhau sẽ khuếch đại hay không khuếch đại một đoạn DNA của bộ gen, phụ thuộc vào vị trí bắt cặp bổ sung của nó với DNA khuôn. Ví dụ, sẽ không có đoạn DNA nào được khuếch đại nếu mồi bắt cặp quá xa nhau hoặc đầu 3’OH của mồi không bắt cặp ngược chiều với nhau. Vì thế, nếu xảy ra một đột biến tại vị trí trên DNA mà mồi đã bắt cặp trước đó thì sẽ không có sản phẩm PCR nào được tạo ra, dẫn đến kết quả khác so với kết quả ban đầu (
Ưu điểm của kỹ thuật RAPD:
- Chỉ cần 1 lượng nhỏ DNA
- Không cần hiểu biết trước về genome cần nghiên cứu.
- Tương đối nhanh và rẻ.
- Không cần sử dụng đồng vị phóng xạ. Hạn chế của kỹ thuật RAPD:
- Hầu như tất cả dấu RAPD là trội, nó không thể chỉ ra đoạn DNA được khuếch đại từ một locus là đồng hợp hay dị hợp. Dấu RAPD đồng trội, có thể khuếch đại những đoạn DNA có kích thước khác nhau từ cùng một locus, thì hiếm khi được phát hiện.
- PCR là một phản ứng hóa học dưới sự tác động của enzyme, vì vậy chất lượng và nồng độ của DNA mẫu (khuôn), nồng độ của các thành phần tham gia phản ứng PCR (dNTP,Mg++,...), và điều kiện của chu kỳ PCR cũng ảnh hưởng mạnh đến kết quả PCR. Do đó, kỹ thuật RAPD nổi tiếng phụ thuộc vào điều kiện thí nghiệm
và cần cận thận phát triển quy trình thí nghiệm để có thể lặp lại kết quả thí nghiệm.
- Sự bắt cặp không khớp giữa mồi và DNA khuôn có thể là nguyên nhân dẫn đến sự thiếu hoặc tăng lên một số băng trong sản phẩm PCR. Vì vậy, kết quả của kỹ thuật RAPD thì có thể khó giải thích.
(
CHƯƠNG 3
PHƯƠNG TIỆN VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
3.1 Phương tiện nghiên cứu
3.1.1 Thời gian và địa điểm nghiên cứu
- Thời gian nghiên cứu: từ tháng 2/2009 đến tháng 6/2009.
- Địa điểm nghiên cứu: Phòng Sinh học Phân tử- Viện Nghiên cứu và Phát triển
Công nghệ Sinh học- Trường Đại học Cần Thơ
3.1.2Dụng cụ, thiết bị
- Bình tam giác, tuýp phản ứng PCR, bọc nylon đựng mẫu, cân điện tử, tủ lạnh giữ mẫu, máy lắc mẫu, máy li tâm, bộ micropipet.
- Bộ điện di một chiều run one.
- Tủ cấy TELSTAR Av 100.
- Máy đo OD BECKMAN COULTER.
- Máy đọc và chụp gel.
- Máy PCR Perkin Elmer 9700 (Hoa Kỳ).
- Máy vi tính phân tích và lưu trữ số liệu.
3.1.3 Nguyên vật liệu
Mẫu lá 28 cây măng cụt từ 28 vườn ở Bến Tre (xem phụ lục).
3.1.4 Hóa chất
- TE (pH=8,0), ethanol 70 % và 96%.
- Sodium dodecyl sulfate (SDS) 10 % .
- Cetyl Trimethyl Ammonium Bromide (CTAB) 10 % NaCl 0,75 M.
- Chloroform: Isoamyl alcohol (tỉ lệ 24:1).
- RNase, nước cất, PCR buffer, Taq-polymerase.
- Deoxyribonucleoside triphosphate (dNTPs) gồm dATP, dTTP, dCTP, dGTP.
- Mồi RAPD.
- Agarose, loading buffer, Ethidium Bromide (EtBr), Ladder 100bp.
3.2 Phương pháp nghiên cứu
3.2.1 Ly trích DNA
Mẫu lá thu về được trích DNA theo qui trình của Roger và Bendich (1988) (phụ lục). DNA sau khi ly trích sẽ được trữ trong dung dịch TE 0.1x ở -200C. DNA sau khi trích sẽ được kiểm tra bằng điện di trên gel agarose 0.8 % (0.32 gram agarose, 40 ml TE 1X, 0.8 l EtBr) ở hiệu điện thế 100 v trong khoảng 15
phút hoặc đo OD.
3.2.2. Phản ứng PCR.
Thực hiện phản ứng PCR sản phẩm DNA thu được với 9 mồi RAPD (Bảng 1). Bảng 1. Các mồi RAPD sử dụng trong phân tích đa hình.
Mồi
Trình tự (5’ – 3’)
Tm
A13
CGACACCCAC
37.7
SO15
TGGCGTCCTT
37.5
SN20
GGTGCTCCGT
39.9
SN06
GAGACGCACA
35.3
A02
TGCCGAGCTG
40.7
OPS05
TTTGGGGCCT
32
OPN09
TGCCGGCTTG
34
OPH18
GAATCGGCCA
35.2
OPO05
CCCAGTCACT
32
Thành phần phản ứng PCR :
Hóa chất
Thể tích (25µl)/phản ứng
Nồng độ gốc
Nước cất
Buffer 9 dNTPs Mồi
Taq DNA polymerase
DNA Tổng thể tích
18,5
2,5
1
0,5
0,5
2
25
1X
20 mM
100ρM
5U/µl
Thực hiện PCR theo chu trình nhiệt :
45 chu kỳ
940 940
5’ 15”
35o-40o
15”
720 720
1’20” 10’
40
Sản phẩm PCR được điện di trên gel agarose 1.5 % với Ethidium Bromide (2
µl/100 ml), điện thế 100 V trong thời gian 85 phút, với ladder 100 bp. Ladder 100 bp cho 10 băng phân tách trên gel có kích thước giảm dần theo chiều điện di, mỗi băng hơn kém nhau 100 bp, kích thước lớn nhất là 1000 bp và nhỏ nhất là 100 bp. Các băng được hiển thị nhờ tia cực tím.
3.2.3. Phân tích kết quả.
Số liệu RAPD được ghi nhận dựa vào thang chuẩn 100 bp. Sự có hoặc không có một băng nào đó trên gel sẽ được ghi nhận là 1 hoặc 0 cho mỗi mẫu. Số liệu ghi nhận được lưu trữ bằng phần mềm Excel, sau đó được phân tích bằng phần mềm BioDiversity Professional.
4.1 Trích DNA
CHƯƠNG 4
KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN
DNA sau khi li trích sẽ được kiểm tra độ tinh sạch trên gel agarose 0.8% hoặc đo
OD. Những mẫu cho vệt băng sáng rõ, sạch được chọn cho phân tích tiếp theo.
DNA
C1 C1’ * 2’ C3 C3’C4 C4’ C5 * C6 C6’C7 C7’ * *
* *
Hình 1 . Kết quả kiểm tra nhanh DNA sau khi trích
( *: các mẫu trích không đạt yêu cầu)
(xem tiếp phần phụ lục) Các mẫu không đạt yêu cầu do bị nhiễm nhiều, phần phía dưới vạch DNA đậm và vạch DNA không liền lạc và rõ.
Bảng 2: Kết quả đo nồng độ DNA
Sample
ID
abs
260nm
Abs
280nm
260nm
280nm
Nồng độ
(ng/µl)
280nm
260nm
C1
0.2889
0.1269
1.8419
0.5429
144.45
C1’
0.4668
0.2456
1.9007
0.5261
233.4
C2
0.1086
0.0658
1.6509
0.6057
54.3
C2’
0.1546
0.0890
1.7374
0.5756
77.3
C3
0.0911
0.0554
1.6453
0.6078
45.55
C3’
0.0758
0.0482
1.5734
0.6356
37.9
C4
0.0593
0.0363
1.6324
0.6126
29.65
C4’
0.0774
0.0466
1.6604
0.6023
38.7
…
…
…
…
…
…
(xem tiếp phần phụ lục)
Chỉ số A260/A280 nằm trong khoảng 1,8-2 là mẫu sạch.
4.2 Kết quả phản ứng PCR với mồi RAPD
Sau khi thực hiện PCR với 9 mồi RAPD ở bảng 1 , thu được 7 mồi cho kết quả
thích hợp để phân tích đa hình. Kết quả được trình bày ở bảng 3. Bảng 3 . Kết quả RAPD dòng măng cụt ở Bến Tre
( Số 0: Phân đoạn DNA không được nhân, Số 1: Phân đoạn DNA được nhân)
(xem tiếp phần phụ lục) Các băng nhân bản được sử dụng như là các chỉ thị RAPD bao gồm hai loại: đơn hình và đa hình. Băng đơn hình có mặt trong tất cả các mẫu nghiên cứu, còn băng đa hình xuất hiện ở mẫu này nhưng lại vắng mặt ở mẫu khác. Số lượng băng đa hình và tỷ lệ của chúng được trình bày ở bảng 4.
Bảng 4. Các mồi RAPD được sử dụng trong phân tích tương quan di truyền . (Xây
dựng dựa trên bảng kết quả RAPD dòng măng cụt ở Bến Tre)
Mồi
Tổng số băng thu
được
Số băng đa hình
Tỷ lệ băng đa hình
A13
9
7
77,78%
SO15
9
6
66,67%
SN20
11
10
90,91%
SN06
5
3
60%
A02
4
1
25%
OPS05
9
8
88,89%
OPN09
4
3
75%
Tổng
51
38
74,51%
Trong tổng số 51 băng nhận được có 13 băng đơn hình, chiếm 25,49% và 38 băng đa hình, chiếm 74,51%, kích cỡ các băng từ 150 bp đến 1000 bp.Trong số 7 mồi sử dụng phân tích RAPD thì mồi SN20 cho kết quả khuếch đại nhiều nhất (11 băng) và tỷ lệ đa hình cao nhất (90,91%), mồi A02 thấp nhất với 4 băng và tỷ lệ
băng đa hình là 25%.
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
500bp
Hình 2. Kết quả PCR mồi A13 các mẫu từ 1 10
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13
500bp
Hình 3. Kết quả PCR mồi OPS05 các mẫu từ 1 13
Các băng đa hình là cơ sở để phân biệt giữa các mẫu với nhau, băng 550 bp mồi OPS05 chỉ xuất hiện ở mẫu số 5 mà không xuất hiện ở các mẫu khác. Băng 350 bp mồi SO15 chỉ xuất hiện ở 2 mẫu số 5 và số 6. Mẫu số 11 và 13, c7 và c10 cho các băng giống nhau với 7 mồi. Mẫu 9 và 10 cho các băng giống nhau ở 6 mồi, ở mồi OPS05 cho 1 băng khác biệt có kích thước 200 bp; tương tự mẫu 17 và 19 chỉ
khác nhau ở băng 650 bp mồi SN06.
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
500bp
Hình 4. Kết quả PCR mồi OPN09 các mẫu từ 1 14
(xem tiếp phần phụ lục) Từ những số liệu thu được ở bảng 4, sử dụng phần mềm BioDiversity Professional ta thu được kết quả tương quan di truyền dòng măng cụt ở Bến Tre (bảng 5)
Ta thấy hệ số đồng dạng di truyền tương đối cao, hệ số đồng dạng di truyền ở mẫu số 15 thấp nhất cũng dao động trong khoảng 64,52 đến 85, mẫu số 10 dao động từ
66,67 đến 98,88. Mẫu 11 và 13, c7 và c10 có hệ số đồng dạng 100. Dòng măng cụt có hệ số tương quan di truyền dao động từ 58,46 đến 100, và hệ số tương quan di truyền trung bình là 85,07.
Bảng 5. Kết quả phân tích tương quan di truyền dòng măng cụt ở Bến Tre.
(xem tiếp phần phụ lục) Dựa trên các phân tích về tương quan di truyền sử dụng phần mềm BioDiversity Professional vẽ giản đồ phân nhóm 28 dòng măng cụt ở Bến Tre (hình 5 ). Nhìn vào giản đồ ta thấy có 5 nhóm cơ bản: nhóm 1 bao gồm mẫu c7,c10 giống nhau hoàn toàn và c8 giống nhau 98,80%, nhóm 2 gồm mẫu 11,13 giống nhau hoàn
toàn và 12 giống nhau 97,73%, nhóm 3 gồm mẫu 9,10 giống nhau 98,88%, nhóm
4 gồm mẫu 17 và 19 giống nhau 98,90%, nhóm 5 gồm mẫu c2 và c3 giống nhau
91,43%.
Từ các nhóm cơ bản ta có:
- Nhóm 6 gồm nhóm 1 và mẫu c4,c1 giống nhau 97,67%
- Nhóm 7 gồm nhóm 3, nhóm 4 và mẫu số 2, 3, 4, 16, 18, 20 giống nhau
97,67%.
- Nhóm 8 gồm nhóm 6 và nhóm 2 giống nhau 96,62%.
Hình 5. Giản đồ phân nhóm 28 dòng măng cụt ở Bến Tre.
- Nhóm 9 gồm nhóm 7 và mẫu số 7 giống nhau 96,62%.
- Nhóm 10 gồm nhóm 9 và mẫu số 6 giống nhau 95,83%.
- Nhóm 11 gồm nhóm 10 và nhóm 8 giống nhau 95,55%.
- Nhóm 12 gồm nhóm 11 và mẫu số 5 giống nhau 94,84%.
- Nhóm 13 gồm nhóm 12 và mẫu số 8 giống nhau 94,25%.
- Nhóm 14 gồm nhóm 13 và mẫu số 1 giống nhau 94,11%.
- Nhóm 15 gồm nhóm 14 và mẫu c2,c3 giống nhau 91,42%.
- Nhóm 16 gồm nhóm 15 và mẫu số 14 giống nhau 89,85%.
- Nhóm 17 gồm nhóm 16 và mẫu c5 giống nhau 88,60%.
- Nhóm 18 gồm nhóm 17 và mẫu số 15 giống nhau 72,72%.
5.1 Kết luận
CHƯƠNG 5
KẾT LUẬN VÀ ĐỀ NGHỊ
Phân tích RAPD 28 dòng măng cụt ở tỉnh Bến Tre với 7 mồi, kết quả nhận được 38 băng đa hình trong tổng số 51 băng (chiếm tỷ lệ 74,51%). Mồi SN20 cho kết quả khuếch đại và tỷ lệ băng đa hình cao nhất.
Kết quả phân tích di truyền cho thấy dòng măng cụt ở Bến Tre có tương quan di truyền cao với hệ số tương quan di truyền dao động từ 58,46 đến 100, và hệ số tương quan di truyền trung bình là 85,07.
5.2 Đề nghị
Thực hiện khảo sát kiểu hình song song với nghiên cứu đồng dạng di truyền
để có thể so sánh, đối chiếu, nghiên cứu sâu hơn về cây măng cụt.
Mở rộng số lượng mồi RAPD để chọn được mồi thích hợp hơn cho phân tích RAPD ở cây măng cụt.
TÀI LIỆU THAM KHẢO
Bai G, Ayele M, Tafera H, Nguyen HT.2000. ”Genetic diversity in tef (Era- grostis tef (Zucc) Trotter) and its relatives as revealed by Random Amplified Polymorphic DNAs”, Euphytica 112, 15-22.
Carman JG.2001. ”The gene effect: Genome collision and apomixes”. In: Savi- dan Y, Carman JG, Dresselhaus T (Eds) The Flowering of Apomixis: From Mechanisms to Genetic Engineering, CIMMYT, IRD, European Commission DG, Mexico, DF, pp 95-110.
Đỗ Tất Lợi.1986. ”Những cây thuốc và vị thuốc Việt Nam”, nxb Khoa học và Kỹ
thuật, Hà Nội (1986) 442.
Fevzi BARDAKCI. 2001. “Random Amplified Polymorphic DNA (RAPD) Markers”, Turk J Biol 25 (2001) 185-196© T.BÜTAK.
Koltunow AM, Bicknell RA, Chaudhury AM.1995. ”Apomixis: Molecular strategies for the generation of genetically identical seeds without fertiliza-
tion”, Plant Physiology 108, 1345-1352.
K. M. Devaiah and Padma Venkatasubramanian. 2008. “Development of SCAR marker for authentication of Pueraria tuberosa (Roxb. ex. Willd.) DC”, CURRENT SCIENCE, VOL. 94, NO. 10, 25 MAY 2008.
Lê Trần Đức.1997. ”Cây thuốc Việt Nam”, nxb Nông nghiệp, Hà Nôi (1997)
718.
Mullis, K..1986. ”Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: The polymerase chain reaction”. Cold Spring Harb. Symp. Quantitave Biology 51 (Part
1): 263-273.
Murphy RW, Sites JW, Buth DG, Haufler CH.1996. ”Proteins: Isozyme elec- Trophoresis”, In: Hillis DM, Moritz C, Mable BK (Eds) Molecular Systematics,
Sinauer Associates Inc. Publ. Sunderland, Massachusetts, pp 45-126.
Nguyễn Thị Thanh Mai. 2005. ”Kỹ thuật trồng & thâm canh cây măng cụt”, Hà
Nội: Nông Nghiệp,39tr, 19cm.- 634.655/ M103.
Ohmori T, Murata M, Motoyoshi F.1995. ”Identification of RAPD markers linked to the Tm-2 locus in tomato”, Theoretical and Applied Genetics 90, 307-
311.
Paterson AH, Tanksley SD, Sorrells ME .1990. “DNA markers in plant im- Provement”, Advances in Agronomy 8, 39-89.
Phạm Hoàng Hộ.1970. ”Cây cỏ miền nam Việt Nam”, Bộ Giáo Dục, Trung tâm
Học liệu, Sài Gòn (1970) 267.
Prabowo LP.2002. ”Morphological variability studies on mangosteen (Garcinia mangostana L.) population at Trenggalek, Purworejo, Purwakarta and Leuwiliang”, BSc Thesis, Bogor Agricultural University, 28 pp.
Ramage CM, Sando L, Peace CP, Carol BJ, Drew RA.2004. ”Genetics diversity revealed in the apomictic fruit species Garcinia mangostana L.(mangosteen)”, Euphytica 136, 1-10.
Rogers, S. O., A. J. B. Bendich.1988. ”Extraction of DNA from plant tissues”, Plant molecular Biology Manual. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, printed in Belgium. A6:1-10.
Sobir Roedhy Poerwanto.2007. ”Mangosteen Genetics and Improvement”, International Journal of Plant Breeding ©2007 Global Science Books , 13 July,
2007.
Thomas SC.1997. “Geographic parthenogenesis in a tropical forest tree”. Ameri- can Journal of Botany 84, 1012-1015.
Võ Quang Yến.2005. “ mangcut.htm“, 2/2009.
Vũ Công Hậu.2000. ”Trồng cây ăn quả ở Việt Nam“, 3rd, Hà Nội: Nông Nghiệp,
489tr.
Warude DNYANESHWAR, Chavan PREETI, Joshi KALPANA,* and Patwardhan BHUSHAN. 2006. “Development and Application of RAPD-SCAR Marker for Identification of Phyllanthus emblica LINN”, Biol. Pharm. Bull.
29(11) 2313—2316 (2006).
Williams JGK, Kubelik AR, Livak KJ, Raflski JA, Tingey SV.1990. ”DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers”, Nucleic Acids Research 18, 6531-6535.
Zakaria Ahmed. 2006. “Optimization of PCR Conditions in vitro for Maximum Amplification of DNA from Xanthomonas campestris 13551”, Journal of Applied Sciences Research 2(3): 112-122, 2006© INSInet Publication.
WEBSITE:
wsID=1441
bentre.gov.vn/index.php?option=com_content&task=view&id=518&Itemid=79
PHỤ LỤC
1. Danh sách địa điểm thu mẫu ở Bến Tre.
STT
Mẫu
Chủ vườn
Địa chỉ
Điện thoại
1
C1
Nguyễn Thị Chi
ấp Phú Khương
618592
2
C2
Huỳnh Trung Nguyễn
Phú Khương
3
c3
Nguyễn Hữu Trí
ấp Tiên Hưng
0753620393
4
c4
Nguyễn Hữu Tâm
Tiên Hưng
5
c5
Mai Đình Quang
Tiên Hưng
3867172
6
c7
Trần Định Thuỷ
Phú Hoà- Quới Thạnh-
Châu Thành
0753603115
7
c8
Lê Quốc Đạt
Quới Thạnh
8
c10
Lê Quốc Thông
Phú Hoà- Quới Thạnh
9
1
Lê Xuân Đa
ấp An Thạnh, Long Thới
873218
10
2
Nguyễn Hữu Dụng
Long Thới
898030
11
3
Nguyễn Duy Phúc
Long Thới
12
4
Nguyễn Tuấn Dũng
Long Thới
13
5
Nguyễn Hữu Thạnh
Long Thới
14
6
Lê Thị Kim Sa
An Thạnh, Long Thới
15
7
Đường Văn Biết
Long Thới
01697142292
16
8
Nguyễn Văn Minh
Long Thới
17
9
Lương Văn Khanh
An Thạnh
873437
18
10
Phạm Thị Bãy
Tân An
19
11
Trương Văn Đời
Chợ cũ
20
12
Nguyễn Văn Thuận
Chợ cũ
0753668360
21
13
Trịnh Văn Bé Tư
Chợ cũ
0753668349
22
14
Nguyễn Đức Hiền
Chợ cũ
23
15
Nguyễn Thiện Phát
Chợ cũ
668161
24
16
Trịnh Văn Bé Tám
Chợ cũ
0753668358
25
17
Lê Chí Thanh
Chợ cũ
26
18
Phạm Công Trương
Chợ cũ
984308239
27
19
Nguyễn Văn Châu
chợ cũ
28
20
Nguyễn Văn Tám
Chợ cũ
2. Qui trình tinh sạch DNA của Rogers and Bendich (1988)
- Cắt mịn mẫu lá non cho vào tube 2.2 ml.
- Cho bi sắt vào và ngâm trong Nitơ lỏng 10 phút.
- Nghiền mẫu ba lần bằng máy nghiền (27 lần/s trong 30 giây).
- Cho 1 ml EB vào.
- Cho tiếp 50 l SDS 10%.
- Ủ trong nước 650C trong 30 phút (đảo nhẹ sau 5 phút).
- Li tâm 10 phút 13000 rpm.
- Lấy 800 l phần trên chuyển sang tube mới.
- Cho một lượng tương đương Isopropanol vào, lắc đều.
- Ủ 120 phút ở -200C.
- Li tâm 10 phút, 13000 rpm. Bỏ nước lấy phần trầm hiện.
- Cho 400 l TE 0.1 vào, thêm 5 l Rnase, ủ 20 phút trong nước 370C.
- Cho 400 l CTAB vào, ủ 15 phút trong nước 650C.
- Cho 800 l Chloroform/Isoamylalcohol (24:1), đảo nhẹ.
- Li tâm 5 phút 13000 rpm.
- Lấy 700 l phần trên (tránh cặn) chuyển sang tube mới.
- Cho 1.4 ml Ethanol 96% làm lạnh vào, lắc nhẹ để ở nhiệt độ phòng 15 phút.
- Li tâm 10 phút 13000 rpm. Bỏ nước lấy phần cặn.
- Cho 700 l Ethanol 70% làm lạnh vào, lắc nhẹ, li tâm 10 phút 13000 rpm. Bỏ nước lấy phần cặn.
- Lặp lại lần nữa với Ethanol 70% làm lạnh. Thấm miệng tube trên giấy.
- Sấy chân không 10 phút ở 450C.
- Cho 200 l TE 0.1 vào, ủ ở -200C.
3. Kiểm tra nhanh DNA sau khi trích.
C1 C1’2 2’ C3 C3’C4 C4’C5 * C6 C6’C7 C7’ * *
C1 C1’C8 C8’C10C10’
C10 C10’
Mẫu DNA từ c1 c10
Bảng 2: Kết quả đo nồng độ DNA sau khi trích.
Sample
ID
abs
260nm
abs
280nm
260nm
280nm
Nồng
độ
(ng/µ l)
280nm
260nm
C1
0.2889
0.1568
1.8419
0.5429
144.45
C1’
0.4668
0.2456
1.9007
0.5261
233.4
C2
0.1086
0.0658
1.6509
0.6057
54.3
C2’
0.1546
0.0890
1.7374
0.5756
77.3
C3
0.0911
0.0554
1.6453
0.6078
45.55
C3’
0.0758
0.0482
1.5734
0.6356
37.9
C4
0.0593
0.0363
1.6324
0.6126
29.65
C4’
0.0774
0.0466
1.6604
0.6023
38.7
C5
0.2652
0.1469
1.8048
0.5541
132.6
C5’
0.3671
0.1966
1.8674
0.5355
183.55
C7
0.4523
0.2537
1.7831
0.5608
226.15
C7’
0.2097
0.1203
1.7439
0.5734
104.85
C8
0.0922
0.0502
1.8363
0.5446
46.1
C8’
0.0873
0.0468
1.8657
0.5360
43.65
C10
0.1274
0.0771
1.6525
0.6051
63.7
C10’
0.0964
0.0535
1.8005
0.5554
48.2
1
0.1823
0.0912
2.0000
0.5000
91.15
1’
0.2216
0.1108
2.0000
0.5000
110.8
2
0.1268
0.0616
2.0579
0.4859
63.4
2’
0.1794
0.0844
2.1257
0.4704
89.7
3
0.2565
0.1283
2.0000
0.5000
128.25
3’
0.1688
0.0844
2.0000
0.5000
84.4
4
0.0318
0.0168
1.8900
0.5291
15.9
4’
0.0893
0.0483
1.8500
0.5405
44.65
5
0.0328
0.0176
1.8600
0.5376
16.4
5’
0.0685
0.0343
2.0000
0.5000
34.25
6
0.0408
0.0233
1.7500
0.5714
20.4
6’
0.0830
0.0532
1.5600
0.6410
41.5
7
0.0709
0.0430
1.6500
0.6061
35.45
8
0.2206
0.1053
2.0941
0.4775
110.3
8’
0.2310
0.1092
2.1145
0.4729
115.5
9
0.0560
0.0386
1.4500
0.6897
28
10
0.0469
0.0281
1.6700
0.5988
23.45
11
0.2539
0.1188
2.1370
0.4679
126.95
11’
0.2337
0.1104
2.1165
0.4725
116.85
12
0.3988
0.2035
1.9600
0.5102
199.4
13
0.0459
0.0287
1.6000
0.6250
22.95
14
0.1023
0.0553
1.8508
0.5403
51.15
14’
0.1550
0.0756
2.0506
0.4877
77.5
15
0.1010
0.0536
1.8845
0.5306
50.5
15’
0.1210
0.0634
1.9079
0.5241
60.5
16
0.0606
0.0356
1.7000
0.5882
30.3
17
0.0724
0.0426
1.7000
0.5882
36.2
18
0.0595
0.0329
1.8100
0.5525
29.75
19
0.0515
0.0277
1.8600
0.5376
25.75
20
0.2426
0.1255
1.9331
0.5173
121.3
20’
0.2319
0.1123
2.0655
0.4841
115.95
4. Hình gel kết quả PCR
c1 c2 c3 c4 c5 c7 c8 c10 11 12 13 14 15
16 17 18 19 20
Mồi A13 mẫu c1 20
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
Mồi A13 mẫu 1 10
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
Mồi SO15 mẫu 1 10
c1 c2 c3 c4 c5 c7 c8 c10 11 12 13 14 15
16 17 18 19 20
Mồi SO15 c1 20
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
Mồi SN20 mẫu 1 10
c1 c2 c3 c4 c5 c7 c8 c10 11 12 13 14 15
16 17 18 19 20
Mồi SN20 c1 20
c1 c2 c3 c4 c5 c7 c8 c10 1 2 3 4 5
Mồi SN06 mẫu c1 5
6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20
Mồi SN06 mẫu 6 20
c1 c2 c3 c4 c5 c7 c8 c10 1 2 3 4 5
Mồi A02 mẫu c1 5
6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20
Mồi A02 mẫu 6 20
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13
Mồi OPS05 mẫu 1 13
16 17 18 19 20 c1 c2 c3 c4 c5 c7 c8 c10
Mồi OPS05 mẫu 16 c10
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
Mồi OPN09 mẫu 1 14
16 17 18 19 20 c1 c2 c3 c4 c5 c7 c8 c10
Mồi OPN09 mẫu 16 c10
C8 C2 C3 3
Mồi SNO6 mẫu C8, mồi OPN09 mẫu C2,C3 Mồi SO20 mẫu 3
14 15 15 15
PCR mẫu 14 với mồi OPS05, mẫu 15 lần lượt các mồi SO15+OPS05+OPN09
Chỉ thị RAPD
C1
C2
C3
C4
C5
C7
C8
C10
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
Mồi
băng
A13
900
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
815
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
0
1
1
1
1
1
700
1
0
0
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
615
0
0
0
0
1
0
0
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
0
0
0
0
1
1
1
1
1
600
0
0
0
0
1
0
0
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
0
0
0
0
1
1
1
1
1
515
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
450
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
275
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
200
1
1
1
1
1
1
1
1
0
0
0
0
0
1
1
0
0
0
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
SO15
950
1
1
0
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
0
1
0
1
0
0
0
0
0
825
1
1
0
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
0
1
0
0
0
1
0
1
1
700
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
650
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
500
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
450
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
350
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
1
1
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
300
1
0
0
0
0
0
0
0
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
0
0
0
0
0
0
1
1
1
1
200
1
0
0
1
1
1
1
1
0
0
0
1
1
1
1
0
0
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
0
SN20
1000
1
0
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
900
1
0
0
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
0
1
1
1
1
1
715
1
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
0
1
1
1
1
1
1
0
0
1
1
1
1
1
700
1
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
0
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
600
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
525
1
0
0
1
0
1
1
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
475
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
425
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
300
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
215
0
0
1
0
0
0
0
0
0
0
0
0
1
1
1
1
1
1
0
0
0
1
1
0
0
0
0
0
5. Bảng 3. Kết quả RAPD dòng măng cụt ở Bến Tre.
150
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
1
1
0
0
0
0
1
1
1
1
0
0
0
0
0
0
SN06
650
1
1
1
1
1
1
1
1
0
0
1
0
0
1
0
1
0
0
1
1
1
1
0
0
1
0
0
1
450
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
350
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
225
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
175
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
A02
900
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
650
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
400
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
300
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
OPS05
1000
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
0
1
1
750
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
625
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
550
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
1
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
475
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
400
1
1
0
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
0
1
1
1
1
1
350
0
0
0
0
0
0
0
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
0
1
1
1
1
0
300
1
0
0
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
1
200
1
1
1
1
1
0
0
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
OPN09
800
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
500
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
275
1
1
1
1
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
0
1
1
1
1
1
225
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
7. Bảng 5. Kết quả phân tích tương quan di truyền dòng măng cụt ở Bến Tre.
Các file đính kèm theo tài liệu này:
- 3042672.doc