BÀN LUẬN
Trong nghiên cứu này, chúng tôi đã sử dụng kỹ
thuật SYBR Green real-time PCR để khuếch đại vùng
gen cfb mã hóa cho yếu tố CAMP tìm thấy ở các
chủng LCB. Các quy trình PCR phát hiện LCB ở phụ
nữ mang thai phần lớn hướng đến khuếch đại vùng
gen đích này [6],[11],[16]. Các nghiên cứu khác đã
chỉ ra kỹ thuật PCR phát hiện LCB với vùng gen cfb có
độ nhạy 75,3% và độ đặc hiệu 100% [12]; độ nhạy,
độ đặc hiệu theo thứ tự là 90,5%, 96,1% [1]; độ nhạy
của PCR là 92,8 và độ đặc hiệu là 81,1% [3]GBS. Điều
này góp phần cho sự lựa chọn vùng gen cfb nhằm
phát hiện LCB trong nghiên cứu này là hợp lý.
Nghiên cứu này sử dụng kỹ thuật real-time PCR
với chất màu SYBR Green có thể giúp phát hiện sản
phẩm khuếch đại ngay trong quá trình khuếch đại
không qua giai đoạn điện di và nhuộm sản phẩm
như đối với kỹ thuật PCR cổ điển. Do đó, kỹ thuật
này có ưu điểm hơn là tránh nguy cơ ngoại nhiễm
và cho kết quả nhanh hơn so với kỹ thuật PCR cổ
điển. Ngoài ra, kỹ thuật real-time PCR sử dụng SRBR
Green mà không sử dụng probe cũng góp phần giảm
giá thành rất nhiều, phù hợp với những nước đang
phát triển như Việt Nam chúng ta.
Một điểm hạn chế của kỹ thuật real-time PCR
khi sử dụng chất màu SYBR Green là chất màu này
có thể kết hợp với các sản phẩm DNA không đặc
hiệu khác nếu có và gây nên trường hợp dương tính
giả. Tuy nhiên, điều này có thể được khắc phục khi
thực hiện kỹ thuật với nhiệt độ cặp đôi gần sát với
nhiệt độ tan chảy của cặp mồi trong quy trình. Trong
nghiên cứu này, vấn đề này đã được chúng tôi kiểm
tra bằng cách điện di và nhuộm màu các sản phẩm
DNA tạo thành sau khuếch đại, tất cả kết quả đều
cho sản phẩm đích 281bp (Hình 4). Điều này chứng
tỏ sự thành công của kỹ thuật SYBR Green real-time
PCR trong nghiên cứu này trong việc phát hiện LCB.
Trong nghiên cứu này, chúng tôi sử dụng cả 2 kỹ
thuật nuôi cấy và real-time PCR. Kết quả cho thấy sự
tương đồng cao khi so sánh 2 kỹ thuật nuôi cấy và
PCR với chỉ số Kappa là 0,77.
Áp dụng kỹ thuật SYBR Green real-time PCR
nhằm phát hiện LCB, kết quả chỉ ra tỷ lệ mang LCB
trong nhóm nghiên cứu của chúng tôi là 9,5% (11
thai phụ). Kết quả nghiên cứu của chúng tôi thấp
hơn nghiên cứu của Vũ Thị Kim Liên thực hiện ở
Hà Nội với tỷ lệ nhiễm là 30%[16], nghiên cứu của
Lưu Thị Thanh Đào thực hiện ở Cần Thơ với tỷ lệ
nhiễm là 19,5% [9]. Kết quả của chúng tôi tương
đương với tỷ lệ nhiễm ở Đông Nam Á (11,1%) [8]
và 1 số nước châu Á như Trung Quốc là 8,2% [5]
và Hàn Quốc là 11,6%[7]. Trong khi đó, tỷ lệ mang
LCB của phụ nữ mang thai ở nhiều nước cao hơn
như Brazil là 25,4% [14], ở Belgium là 22% [4]the
CDC recommends isolation of the bacterium from
vaginal and anorectal swab samples by growth in
a selective enrichment medium, such as Lim broth
(Todd-Hewitt broth supplemented with selective
antibiotics.
6 trang |
Chia sẻ: hachi492 | Lượt xem: 48 | Lượt tải: 0
Bạn đang xem nội dung tài liệu Phát hiện liên cầu B ở phụ nữ mang thai bằng kỹ thuật SYBR Green real-Time PCR, để tải tài liệu về máy bạn click vào nút DOWNLOAD ở trên
68
Tạp chí Y Dược học - Trường Đại học Y Dược Huế - Tập 9, số 5 - tháng 8/2019
Địa chỉ liên hệ: Trương Văn Trí, email: drtruongtri@gmail.com
Ngày nhận bài: 5/10/2018, Ngày đồng ý đăng: 22/10/2018; Ngày xuất bản: 8/11/2018
Phát hiện liên cầu B ở phụ nữ mang thai bằng kỹ thuật SYBR Green
real-time PCR
Nguyễn Thị Phúc Lộc1, Nguyễn Hoàng Bách2, Lê Văn An2, Nguyễn Thị Châu Anh2
(1) Trường Đại học Duy Tân Đà Nẵng
(2) Bộ môn Vi sinh, Trường Đại học Y Dược, Đại học Huế
Tóm tắt
Mục tiêu: Phát hiện liên cầu nhóm B ở phụ nữ có thai 35-37 tuần bằng kỹ thuật khuếch đại chuỗi gen SYBR
real-time PCR và nuôi cấy. Đối tượng và phương pháp: Dùng khuếch đại gen real-time PCR với chất màu
SYBR Green và nuôi cấy để phát hiện tình trạng mang LCB trên 116 phụ nữ có thai 35-37 tuần. Kết quả: Tỷ lệ
phát hiện phụ nữ mang LCB là 9,5% (11 thai phụ) trong đó real-time PCR cho kết quả dương tính ở cả 11 thai
phụ (9,5%), trong khi nuôi cấy chỉ dương tính với tỷ lệ 6% (ở 7 thai phụ). Khi so sánh 2 kỹ thuật nuôi cấy và re-
al-time PCR, độ tương đồng của cả 2 phương pháp cao với chỉ số Kappa là 0,77. Kiểm tra sản phẩm real-time
PCR bằng phân tích nhiệt độ tan chảy và điện di trên agarose để loại trừ phản ứng dương tính giả cho thấy
kết quả kỹ thuật real-time PCR khuếch đại đúng vùng DNA đích mong muốn. Kết luận: Kỹ thuật real-time PCR
với chất màu SYBR Green cho kết quả hữu ích, thực hiện dễ, giá thành thấp, phù hợp sử dụng để phát hiện
nhanh LCB ở phụ nữ mang thai các phòng xét nghiệm ở Việt Nam có máy real-time PCR.
Từ khóa: liên cầu nhóm B (Streptococcus agalactiae hay LCB), real-time PCR, phụ nữ mang thai
Abstract
Detection of group B Streptococcus (GBS) in pregnant women by SYBR
Green real-time PCR
Nguyen Thi Phuc Loc1, Nguyen Hoang Bach2, Le Van An2, Nguyen Thi Chau Anh2
(1) Duy Tan University, Da Nang
(2) Microbiology Department, Hue University of Medicine and Pharmacy, Hue University
Objectives: Application of SYBR Green real-time PCR and bacterial isolation methods to detect Strepto-
coccus agalactiae (GBS) carriage in women at 35-37 weeks’ gestation. Patients and Method: Use of SYBR
Green real-time PCR and bacterial isolation methods to detect GBS in 116 women at 35 - 37 weeks’ gestation.
Results: The rate of carrier of GBS in women at 35 - 37 weeks gestation was 9.5% (11 pregnant women), in
which real-time PCR method was positive in all positive GBS women, while bacterial culture method was
positive at 6% (7 pregnant women). These methods (culture and real-time PCR) had substantial agreement
with the value of Kappa is 0,77. Checking for the targeted sequence amplification of real-time PCR by the
curve of melting temperature and agarose electrophoresis of amplified product, the real-time PCR product
was correctly targeted at the expected genetic sequence. Conclusion: SYBR Green real-time PCR method for
detecting GBS in pregnant women is useful, low-cost and easy for performing. Therefore, it is suitable for
detecting GBS in diagnostic laboratories where real-time PCRs are available.
Key words: Streptococcus agalactiae (GBS), real-time PCR, pregnant woman.
Nguyễn Thị Châu Anh, email: tcanh@huemed-univ.edu.vn DOI: 10.34071/jmp.2019.5.10
21/1 9 15 7/2019; Ngày xuất bản:26/8/2019
1. ĐẶT VẤN ĐỀ
Streptococcus agalactiae hoặc liên cầu B (LCB)
vẫn là nguyên nhân hàng đầu gây nhiễm khuẩn ở trẻ
sơ sinh [15]. LCB được truyền trực tiếp từ mẹ sang
con trong quá trình sinh, các yếu tố làm dễ như ối vỡ
sớm, chuyển dạ kéo dài [10]. Trong khi đó, có đến
10-30% phụ nữ mang thai nhiễm liên cầu B ở âm
đạo và trực tràng [10].
Từ năm 2002, Trung tâm Kiểm soát và Phòng
chống dịch bệnh Hoa Kỳ (CDC) khuyến nghị việc sàng
lọc liên cầu B ở phụ nữ mang thai từ 35-37 tuần bằng
kỹ thuật nuôi cấy như là tiêu chuẩn vàng nhằm giảm
thiểu nguy cơ nhiễm trùng sơ sinh [13]. Tuy nhiên, kỹ
thuật nuôi cấy lại cho kết quả chậm, độ nhạy thấp do
có thể bỏ sót một số trường hợp vi khuẩn LCB bị ức
chế sự phát triển ngay cả khi đã sử dụng môi trường
chọn lọc. Hiện nay, CDC cũng đã mở rộng khuyến nghị
về vấn đề sàng lọc LCB ở phụ nữ mang thai trong
khoảng thời gian này bằng cách bổ sung thêm các
kỹ thuật khuếch đại gen ngoài phương pháp nuôi
69
Tạp chí Y Dược học - Trường Đại học Y Dược Huế - Tập 9, số 5 - tháng 8/2019
cấy [10]. PCR là kỹ thuật khuếch đại gen cho kết quả
nhanh, độ đặc hiệu cao trong việc sàng lọc LCB đã
được áp dụng ở nơi trên thế giới. Tuy nhiên, ở Việt
Nam, vấn đề sàng lọc LCB ở phụ nữ mang thai vẫn
chưa được quan tâm nhiều. Cả 2 phương pháp nuôi
cấy và PCR này vẫn còn chưa được sử dụng như là kỹ
thuật thường quy tại các cơ sở y tế tại Việt Nam. Với
những lý do nêu trên, chúng tôi thực hiện đề tài “Phát
hiện liên cầu b ở phụ nữ mang thai bằng kỹ thuật
SYBR Green real-time PCR” nhằm xây dựng quy trình
kỹ thuật SYBR Green real-time PCR để áp dụng phát
hiện nhanh, chính xác tỷ lệ LCB ở phụ nữ mang thai.
2. ĐỐI TƯỢNG VÀ PHƯƠNG PHÁP
Thiết kế nghiên cứu: Nghiên cứu mô tả cắt ngang
Đối tượng nghiên cứu: Nghiên cứu được tiến
hành tại bệnh viện Đại học Y Dược Huế. Trong thời
gian từ tháng 3/2017 đến tháng 01/2018 những thai
phụ đến khám thai và sanh tại Bệnh viện Đại học Y
Dược Huế có hội đủ các tiêu chuẩn (1) tuổi thai từ
35 - 37 tuần, (2) không đặt thuốc âm đạo trong vòng
48 giờ trước khi khám, (3) đồng ý thực hiện đúng
quy trình nghiên cứu và (4) đồng ý tham gia nghiên
cứu sẽ được chọn vào mẫu nghiên cứu.
Hai trăm ba mươi hai (232) mẫu âm đạo và trực
tràng được thu thập (1 mẫu âm đạo và 1 mẫu trực
tràng) từ 116 phụ nữ mang thai từ 35 - 37 tuần. Mẫu
sau khi thu thập được chuyển về phòng thí nghiệm
Bộ môn Vi sinh trong vòng 2 giờ.
Vật liệu nghiên cứu:
- Nhóm nghiên cứu sử dụng các gen mồi tự thiết
kế dùng trong kỹ thuật khuếch đại một đoạn gen có
kích thước 281bp, các gen mồi nằm trong vùng gen
cfb mã hóa cho yếu tố CAMP là yếu tố đặc hiệu cho
liên cầu B [6, 11].
Mồi thuận (FP): 5’-TGGAACTCTAGTGGCTGGTG-
CAT-3’
Mồi ngược (RP): 5’-TGTCTCAGGGTTGGCACGCA-3’
- Bộ kít chiết DNA, sinh phẩm dùng để thực hiện
real-time gồm bộ sinh phẩm iPremium iVASYBR Green
qPCR Master Mix của Công ty Việt Á (Viet A Technol-
ogy Corporation, Ho Chi Minh City, Viet Nam).
- Môi trường cấy BHI, BHA (Becton Dickinson,
USA) để phân lập LCB và bộ kit Strep-B-Latex (SSI
Diagnostica, Denmark) để định danh LCB.
Quy trình thực hiện
Tách DNA từ mẫu nghiệm.
Tách chiết DNA của vi khuẩn từ 200 µl mỗi mẫu
bệnh phẩm theo quy trình hướng dẫn của Công ty
Việt Á. Dung dịch 50 µl TE chứa DNA được bảo quản
ở -200C đến khi thực hiện.
Thực hiện SYBR Green real-time PCR:
Thể tích phản ứng PCR là 25µl, trong đó 12,5 µl
SYRB Green qPCR Master Mix, 1 µl mồi thuận, 1 µl
mồi ngược, 5 µl dịch tách DNA và 4,5 µl nước cất
tinh khiết. Quy trình được thực hiện với máy real-
time PCR (Mx3000P qPCR system) với chương trình
nhiệt: 950C trong 10 phút; sau đó là 950C trong 30
giây, 620C trong 30 giây, và 720C trong 30 giây, chu
kỳ trên được lặp lại 40 lần. Phân tích kết quả với
phần mềm Mx Pro (Agilent Technologies Inc, Santa
Clara, USA), mẫu nghiệm dương khi đường cong tín
hiệu chất màu SYBR Green vượt qua đường cơ bản
và có chu kỳ ngưỡng < 35 Ct và khi chứng âm luôn
âm tính. Sản phẩm 281bp DNA có đường cong Tm
tương ứng với Tm của mẫu chứng dương. Chất màu
SYBR Green có thể kết hợp với bất kỳ sản phẩm DNA
không đặc hiệu tạo thành, do vậy trong quá trình tối
ưu với những mẫu dương tính ban đầu được kiểm
tra điện di trên gel agarose 2% và nhuộm màu dye.
Đọc dưới máy đọc huỳnh quang transilluminator.
Kết quả dương tính khi xuất hiện sản phẩm DNA có
kích thước 281bp.
Nuôi cấy liên cầu B
Mỗi mẫu dịch ngoáy âm đạo/trực tràng cũng
được nuôi cấy trong ống nghiệm chứa 2ml BHI
với chất chọn lọc (colistin sulphate (10 mg/ml)
and oxolinic acid (5 mg/ml). LCB được phân lập
trên môi trường thạch BHA có bổ sung 5% máu
thỏ và ủ ở 370 C/24 - 48 giờ. LCB được xác định
dựa vào tính chất hình thái và bắt màu dưới kính
hiển vi, tính chất tan máu của khuẩn lạc, phản ứng
catalase âm và phản ứng ngưng kết latex và sự có
mặt của gen cfb (CAMP) bằng kỹ thuật real-time
PCR nêu trên.
Thai phụ được xác định có LCB khi real-time PCR
dương tính và/hoặc nuôi cấy LCB dương tính ở mẫu
nghiệm ngoáy âm đạo hoặc/và trực tràng.
3. KẾT QUẢ
Nghiên cứu sử dụng 2 kỹ thuật nuôi cấy và SYBR Green real-time PCR để phát hiện LCB ở 232 mẫu nghiệm
(âm đạo và trực tràng/1 thai phụ) ở 116 thai phụ. Tỷ lệ phát hiện LCB ở âm đạo (ÂĐ) hoặc/ và trực tràng (TT)
của các thai phụ là 9,5% (11/116) (Hình 1). Nghiên cứu cho thấy 2 kỹ thuật nuôi cấy và PCR này có độ tương
đồng cao với có chỉ số Kappa là 0,77 (Bảng 1).
70
Tạp chí Y Dược học - Trường Đại học Y Dược Huế - Tập 9, số 5 - tháng 8/2019
Hình 1. Tỷ lệ thai phụ có LCB
Bảng 1. Kết quả kỹ thuật real-time PCR dựa theo nuôi cấy
n = 232 Nuôi cấy (+) Nuôi cấy (-) Tổng
PCR (+) 7 4 11
PCR (-) 0 221 221
Tổng 7 225 232
Ở 11 phụ nữ có mang LCB đều được xác định bằng real-time PCR ở hoặc mẫu nghiệm ngoáy âm đạo hoặc
trực tràng, trong đó có 2 thai phụ (1,7%) cho kết quả dương tính ở cả hai loại mẫu nghiệm âm đạo và trực
tràng. Có 07 thai phụ (6%) vừa có nuôi cấy vi khuẩn dương tính và real-time PCR dương tính ở mẫu nghiệm
dịch âm đạo hoặc trực tràng. Có 04 trường hợp mang LCB (3,4%) chỉ được xác định bằng real-time PCR, trong
đó 01 mẫu nghiệm từ âm đạo và 03 mẫu nghiệm từ trực tràng (Bảng 2).
Bảng 2. Kết quả real-time PCR và phân lập nuôi cấy LCB theo bệnh phẩm
n = 116
real-time PCR (+)
ÂĐ TT ÂĐ và TT Tổng
Nuôi cấy (+) 3 (2,6%) 2 (1,7%) 2 (1,7%) 7 (6%)
Nuôi cấy ( -) 1(0,01%) 3 (2,6%) 0 4 (3,4%)
Tổng 4 (3,4%) 5 (4,3%) 2 (1,7%) 11 (9,5%)
.
Hình 2. Kết quả của SYBR Green real-time PCR
Tính phù hợp của sản phẩm real-time PCR được kiểm tra bằng phân tích đường cong nhiệt độ tan chảy
của sản phẩm và điện di sản phẩm rồi nhuộm màu trên agarose
Mẫu 1 dương tính
Mẫu chứng dương
Mẫu 2 dương tính
Mẫu chứng âm
71
Tạp chí Y Dược học - Trường Đại học Y Dược Huế - Tập 9, số 5 - tháng 8/2019
Hình 3. Mẫu dương tính được phân tích bằng nhiệt độ nóng chảy
1 2 3 4 5 6 7
Hình 4. Sản phẩm của quá trình khuếch đại gen được điện di và đọc kết quả dưới máy đọc huỳnh quang
(1): 100 bp marker, (2): chứng dương, (3): chứng âm, (4, 6,7): mẫu dương, lane (5): mẫu âm.
Mẫu dương tính
Mẫu chứng dương
4. BÀN LUẬN
Trong nghiên cứu này, chúng tôi đã sử dụng kỹ
thuật SYBR Green real-time PCR để khuếch đại vùng
gen cfb mã hóa cho yếu tố CAMP tìm thấy ở các
chủng LCB. Các quy trình PCR phát hiện LCB ở phụ
nữ mang thai phần lớn hướng đến khuếch đại vùng
gen đích này [6],[11],[16]. Các nghiên cứu khác đã
chỉ ra kỹ thuật PCR phát hiện LCB với vùng gen cfb có
độ nhạy 75,3% và độ đặc hiệu 100% [12]; độ nhạy,
độ đặc hiệu theo thứ tự là 90,5%, 96,1% [1]; độ nhạy
của PCR là 92,8 và độ đặc hiệu là 81,1% [3]GBS. Điều
này góp phần cho sự lựa chọn vùng gen cfb nhằm
phát hiện LCB trong nghiên cứu này là hợp lý.
Nghiên cứu này sử dụng kỹ thuật real-time PCR
với chất màu SYBR Green có thể giúp phát hiện sản
phẩm khuếch đại ngay trong quá trình khuếch đại
không qua giai đoạn điện di và nhuộm sản phẩm
như đối với kỹ thuật PCR cổ điển. Do đó, kỹ thuật
này có ưu điểm hơn là tránh nguy cơ ngoại nhiễm
và cho kết quả nhanh hơn so với kỹ thuật PCR cổ
điển. Ngoài ra, kỹ thuật real-time PCR sử dụng SRBR
Green mà không sử dụng probe cũng góp phần giảm
giá thành rất nhiều, phù hợp với những nước đang
phát triển như Việt Nam chúng ta.
Một điểm hạn chế của kỹ thuật real-time PCR
khi sử dụng chất màu SYBR Green là chất màu này
281 bp
72
Tạp chí Y Dược học - Trường Đại học Y Dược Huế - Tập 9, số 5 - tháng 8/2019
có thể kết hợp với các sản phẩm DNA không đặc
hiệu khác nếu có và gây nên trường hợp dương tính
giả. Tuy nhiên, điều này có thể được khắc phục khi
thực hiện kỹ thuật với nhiệt độ cặp đôi gần sát với
nhiệt độ tan chảy của cặp mồi trong quy trình. Trong
nghiên cứu này, vấn đề này đã được chúng tôi kiểm
tra bằng cách điện di và nhuộm màu các sản phẩm
DNA tạo thành sau khuếch đại, tất cả kết quả đều
cho sản phẩm đích 281bp (Hình 4). Điều này chứng
tỏ sự thành công của kỹ thuật SYBR Green real-time
PCR trong nghiên cứu này trong việc phát hiện LCB.
Trong nghiên cứu này, chúng tôi sử dụng cả 2 kỹ
thuật nuôi cấy và real-time PCR. Kết quả cho thấy sự
tương đồng cao khi so sánh 2 kỹ thuật nuôi cấy và
PCR với chỉ số Kappa là 0,77.
Áp dụng kỹ thuật SYBR Green real-time PCR
nhằm phát hiện LCB, kết quả chỉ ra tỷ lệ mang LCB
trong nhóm nghiên cứu của chúng tôi là 9,5% (11
thai phụ). Kết quả nghiên cứu của chúng tôi thấp
hơn nghiên cứu của Vũ Thị Kim Liên thực hiện ở
Hà Nội với tỷ lệ nhiễm là 30%[16], nghiên cứu của
Lưu Thị Thanh Đào thực hiện ở Cần Thơ với tỷ lệ
nhiễm là 19,5% [9]. Kết quả của chúng tôi tương
đương với tỷ lệ nhiễm ở Đông Nam Á (11,1%) [8]
và 1 số nước châu Á như Trung Quốc là 8,2% [5]
và Hàn Quốc là 11,6%[7]. Trong khi đó, tỷ lệ mang
LCB của phụ nữ mang thai ở nhiều nước cao hơn
như Brazil là 25,4% [14], ở Belgium là 22% [4]the
CDC recommends isolation of the bacterium from
vaginal and anorectal swab samples by growth in
a selective enrichment medium, such as Lim broth
(Todd-Hewitt broth supplemented with selective
antibiotics.
5. KẾT LUẬN
Kỹ thuật SYBR Green real-time PCR được sử dụng
để phát hiện liên cầu B ở trực tràng và âm đạo phụ
nữ mang thai cho thấy tỷ lệ phát hiện là 9,5% cao
hơn tỷ lệ phân lập vi khuẩn chỉ 7%. Kỹ thuật này hữu
ích, thực hiện dễ, giá thành thấp, phù hợp để phát
hiện nhanh LCB ở phụ nữ mang thai các phòng xét
nghiệm ở Việt Nam có máy real-time PCR.
TÀI LIỆU THAM KHẢO
1. Alfa MJ, Sepehri S, De Gagne P et al. (2010).
Real-Time PCR Assay Provides Reliable Assessment of
Intrapartum Carriage of Group B Streptococcus. J Clin
Microbiol 48 (9): 3095–3099. doi: 10.1128/JCM.00594-10.
2. Bakhtiari R, Dallal MS, Mehrabadi J et al. (2012).
Evaluation of Culture and PCR Methods for Diagnosis
of Group B Streptococcus Carriage in Iranian Pregnant
Women. 41 6.
3. Bidgani S, Navidifar T, Najafian M, Amin M (2016).
Comparison of group B streptococci colonization in
vaginal and rectal specimens by culture method and
polymerase chain reaction technique. J Chin Med Assoc.
doi: 10.1016/j.jcma.2015.06.021
4. El Aila NA, Tency I, Claeys G et al. (2010). Comparison
of different sampling techniques and of different
culture methods for detection of group B streptococcus
carriage in pregnant women. BMC Infect Dis 10 285. doi:
10.1186/1471-2334-10-285.
5. Ji W, Zhang L, Guo Z et al. (2017). Colonization
prevalence and antibiotic susceptibility of Group B
Streptococcus in pregnant women over a 6-year period in
Dongguan, China. PLoS ONE 12 (8): 1–10.
6. Ke D, Ménard C, Picard FJ et al. (2000). Development
of Conventional and Real-Time PCR Assays for the Rapid
Detection of Group B Streptococci. Clin Chem 46 (3): 324–
331.
7. Kim DH, Min BJ, Jung EJ et al. (2018). Prevalence of
group B streptococcus colonization in pregnant women in
a tertiary care center in Korea. Obstet Gynecol Sci 61 (5):
575–583. doi: 10.5468/ogs.2018.61.5.575.
8. Kwatra G, Cunnington MC, Merrall E et al. (2016).
Prevalence of maternal colonisation with group B
streptococcus : a systematic review and meta-analysis.
Lancet Infect Dis 3099 (16): 1–9. doi: 10.1016/S1473-
3099(16)30055-X.
9. Lưu Thị Thanh Đào, Phạm Văn Linh, Cao Văn Nhựt
(2016). Nghiên cứu tình hình, các yếu tố liên quan nhiễm
liên cầu nhóm B và kết quả điều trị dự phòng nhiễm liên
cầu nhóm B lây nhiễm từ mẹ sang con. Tạp Chí Dược học
Cần Thơ (5): 22–27.
10. McGee L, Schrag S, Verani JR (2010) Prevention
of perinatal Group B streptococcal disease; revised
guidelines from CDC, 2010.
11. Podbielski A, Blankenstein O, Lütticken R (1994).
Molecular characterization of the cfb gene encoding group
B streptococcal CAMP-factor. Med Microbiol Immunol
(Berl) 183 (5): 239–256. doi: 10.1007/bf00198458.
12. Rallu F, Barriga P, Scrivo C et al. (2006). Sensitivities
of antigen detection and PCR assays greatly increased
compared to that of the standard culture method for
73
Tạp chí Y Dược học - Trường Đại học Y Dược Huế - Tập 9, số 5 - tháng 8/2019
screening for group B streptococcus carriage in pregnant
women. J Clin Microbiol 44 (3): 725–728. doi: 10.1128/
JCM.44.3.725-728.2006.
13. Report MW (2002). Prevention of Perinatal Group
B Streptococcal Disease Revised Guidelines from CDC
Centers for Disease Control and Prevention TM. 51
14. Rocchetti TT, Marconi C, Rall VLM, Jose VTMB
(2011) Group B streptococci colonization in pregnant
women : risk factors and evaluation of the vaginal flora.
Arch Gynecol Obstet 283 717–721. doi: 10.1007/s00404-
010-1439-8.
15. Schuchat A (1998) Epidemiology of Group B
Streptococcal Disease in the United States : Shifting
Paradigms. 11 (3): 497–513.
16. Vũ Thị Kim Liên và cs (2013). Nghiên cứu xây dựng
quy trình PCR chẩn đoán nhanh Streptococcus agalactiae
ở phụ nữ mang thai. Tạp chí học thực hành 893 (11) :22-
25.
Các file đính kèm theo tài liệu này:
phat_hien_lien_cau_b_o_phu_nu_mang_thai_bang_ky_thuat_sybr_g.pdf