Nghiên cứu một số đặc điểm bệnh lý chủ yếu của bệnh cúm gia cầm

MỞ ĐẦU Đặt vấn đề Với những lợi thế như vốn đầu tư thấp, chu kì sản xuất ngắn, tạo ra sản phẩm thực phẩm giàu dinh dưỡng phù hợp với xu thế tiêu dùng hiện nay …. Ngành chăn nuôi gia cầm nước ta ngày càng phát triển, chiếm vị trí quan trọng trong sản xuất chăn nuôi nói chung. Hàng năm chăn nuôi gia cầm cung cấp khối lượng thực phẩm đứng thứ 2 sau chăn nuôi lợn, chiếm 17% tổng số thịt hơi các loại. Trong những năm gần đây (2001 – 2004) tổng đàn gia cầm tăng đều hàng năm với tốc độ tăng trưởng bình quân 6,5% năm. Chăn nuôi gia cầm đã trở thành nguồn thu nhập quan trọng với các hộ nông dân và là một trong những nghề có tác dụng xóa đói giảm nghèo nhanh, hiệu quả góp phần chuyển dịch cơ cấu kinh tế trong nông nghiệp. Tuy nhiên trong giai đoạn hiện nay sự bùng phát của dịch cúm gia cầm (Avian Influenza) đang thực sự là trở ngại, gây thiệt hại to lớn cho sản xuất chăn nuôi gia cầm của nước ta. Cùng với hàng loạt quốc gia và vùng lãnh thổ, trong 2 năm 2004 – 2005 đại dịch cúm gia cầm ở Việt Nam xảy ra trên diện rất rộng. Về mặt dịch tễ học quá trình dịch được chia làm 3 đợt. Đợt dịch thứ nhất từ tháng 12/2003 đến 30/3/2004, đợt dịch thứ 2 từ 4/2004 đến 11/2004 và đợt dịch thứ 3 từ 12/2004. Trong đó đợt dịch thứ nhất xảy ra ở mức độ cao và và địa dư phân bố rộng nhất với 2574 xã phường (24,6% số xã phường) 381 huyện thị (60% số huyện thị) thuộc địa bàn 57/64 tỉnh thành có dịch. Theo báo cáo của Ban chỉ đạo Quốc Gia phòng chống dịch cúm gia cầm, thiệt hại trực tiếp của 3 đợt dịch ở Việt Nam là rất lớn lên đến 3.500 tỷ đồng, trong đó thiệt hại do gia cầm chết và tiêu hủy là hơn 1.300 tỷ đồng. Dịch cúm gia cầm đã làm giảm tăng trưởng GDP quốc gia đến 0,5%, ngoài ra còn gây ảnh hưởng nghiêm trọng đến nhiều hoạt động kinh tế xã hội đặc biệt là sức khỏe của cộng đồng. Vì sự phân bố và lưu hành của virus cúm rất rộng, có tính toán toàn cầu do sự trú của các loài chim hoang nên việc dự đoán sự bùng phát dịch cúm gia cầm là rất khó khăn. Để khống chế được dịch bệnh, theo khuyến cáo của OIE và FAO, trong giai đoạn hiện nay, bên cạnh việc thuwch hiện các biện pháp quản lý hành chính và biện pháp sinh học khác, biện pháp khoanh vùng cách li, tiêu hủy triệt để khẩn trương các đàn gia cầm nhiễm bệnh có ý nghĩa quyết định trong việc khống chế dịch bệnh. Để làm được điều này trong thực tế sản xuất việc nhanh chóng chẩn đoán chính xác bệnh cúm gia cầm thông qua các đặc điểm dịch tễ và triệu chứng bệnh tích là vô cùng cần thiết. Xuất phát từ yêu cầu nói trên của thực tiễn sản xuất, chúng tôi tiến hành thực hiện đề tài: “Nghiên cứu một số đặc điểm bệnh lý chủ yếu của bệnh cúm gia cầm”. 1.2.MỤC TIÊU CỦA ĐỀ TÀI -Làm rõ các thông tin về đặc điểm dịch tễ, triệu chứng lam sàng và bệnh tích đại thể để lựa chọn các đặc điểm dặc trưng nhất có thể sử dụng cho việc chẩn đoán nhanh trong thực hành lâm sàng. -Nghiên cứu biến đỏi vi thể các cơ quan quan trọng của gà bị bệnh cúm để bổ xung những thông tin chi tiết về bệnh cúm gia cầm. 1.3.Ý NGHĨA KHOA HỌC VÀ THỰC TIỄN CỦA ĐỀ TÀI - Các kết quả điều tra, nghiên cứu nhằm cung cấp hoàn thiện thêm các thông tin về dịch cúm gia cầm ở Việt Nam. - Góp phần nhanh chóng định hướng chuẩn đoán trong giám sát dịch để kịp thời đề ra các biện pháp khống chế không để dịch lan rộng. TỔNG QUAN TÀI LIỆU GIỚI THIỆU CHUNG VỀ BỆNH CÚM GIA CẦM Bệnh cúm gia cầm là một bệnh truyền nhiễm cấp tính của mọi loại chim do các Subtype khác nhau của virus cúm typ A họ Orthomyxoviridea gây ra. Tùy theo độc lực chủng virus gây bệnh và các điều kiện ngoại cảnh mà biểu hiện bệnh lí ở gia cầm mắc bệnh có sự thay đổi tương đối lớn. Với chủng có độc lực cao HPAI (Highly Pathgenic Avian Influenza) thường gây biển hiện bệnh lí trầm trọng với tỉ lệ chết có thể lên tới 100% gia cầm nhiễm bệnh sau vài giờ đến vài ngày lây nhiễm. Vì thế tổ chức dịch tễ thế giới (OIE) đã xếp Cúm gia cầm vào nhóm A – nhóm những bệnh nguy hiểm nhất. Bên cạnh đó đã xác định được căn nguyên gây cúm gia cầm cũng có thể gây bệnh cúm ở người và một số động vật có vú khác, vì thế hơn bao giờ hết bệnh cúm gia cầm đang ngày càng trở nên nguy hiểm hơn cho sức khỏe con người và sản xuất chăn nuôi nói chung. LỊCH SỬ BỆNH CÚM GIA CẦM VÀ TÌNH HÌNH DỊCH CÚM GIA CẦM TRONG GIAI ĐOẠN 2003 – 2005 Lịch sử bệnh cúm gia cầm Bệnh cúm gia cầm được Porroncito mô tả lần đầu tiên khi nghiên cứu ổ dịch trên gia cầm tại Italia vào năm 1878 với tên gọi là dịch tả gà. Do bệnh gây ra tỉ lệ tử vong rất cao ở gia cầm nên Porroncito đã nhận định rằng đây là bệnh rất nguy hiểm và quan trọng trong tương lai. Tuy nhiên phải tới năm 1901, Cettai và Sawnozzi mới xác định được yếu tố gây bệnh là căn nguyên siêu nhỏ có khả năng qua lọc (Fillter agent). Qua một thời gian rất dài, đến năm 1955 Achafer mới xác định được chính xác nguyên nhân gây bệnh cúm gia cầm là do virus cúm typ A thông qua kháng nguyên bề mặt H7N7 và H7N1. Năm 1963 virus cúm typ A đã được phân lập từ gà tây ở Bắc Mỹ do loại thủy cầm di trú dẫn nhập vào. Bệnh cũng được Beard. C.W mô tả tương đối kỹ vào năm 1971 qua đợt dịch cúm khá lớn trên gà tây ở Mỹ. Các năm tiếp theo bệnh tiếp tục được phát hiện ở Nam Mỹ, Bắc Mỹ, Nam Phi, Trung Cận Đông, Châu Âu, Châu Úc và Châu Á. Đã có rất nhiều báo cáo về các đợt dịch cúm trầm trọng có liên quan đến các virus cúm typ A trong 20 năm qua nhưng đã không được quan tâm một cách đầy đủ. Theo thống kê của Alexander có thể kể đến các ổ dịch lớn: ở Australia (1975 – 1985), Anh (1979), Mỹ (1983 – 1984), Ireland (1983 – 1984), Mexico (1994). Đặc biệt ở Hồng Kông (1997). Cúm gia cầm đã gây nên đại dịch trong chăn nuôi gia cầm và gây thiệt hại to lớn về mọi mặt cho đặc khu kinh tế này. Và đây cũng là lần đầu tiên người ta ghi nhận được virus cúm gà gây bệnh trên gia cầm có thể lây nhiễm và gây tử vong cho người. Do tính chất nguy hiểm của bệnh, nên từ sau khi phát hiện ra virus cúm typ A – Căn nguyên của bệnh, các nhà khoa học đã đi sâu ngiên cứu toàn diện về loài virus này. Các công trình nghiên cứu có hệ thống về bệnh đã lần lượt được công bố ở Úc – 1975, Anh – 1979, Mỹ 1983 – 1984, Ailen 1983 – 1984. Và đặc biệt sau lần hội thảo đầu tiên về cúm gia cầm vào năm 1981 của hiệp hội các nhà chăn nuôi gia cầm trên thế giới và 2 lần liên tiếp vào các năm 1987, 1992 đến nay thì cúm gia cầm luôn là nội dung quan trọng trong các hội nghị về dịch tễ thú y trên thế giới và các nghiên cứu về bệnh nói chung càng chở nên phong phú và đa dạng hơn. 2.2.2. Tình hình dịch cúm gia cầm trên thế giới trong giai đoạn 2003-2005 Theo ban chỉ đạo Quốc Gia phòng chống dịch cúm gia cầm (2005) [3], từ cuối năm 2003 đền nay đã có 10 quốc gia và vùng lãnh thổ xuất hiện dịch cúm gia cầm H5N1 gồm Hàn Quốc, Nhật Bản, Thái Lan, Campuchia, Lào, Indonêsia, Trung Quốc, Malaysia, Hồng Kông, Việt Nam. -Hàn Quốc: Dịch cúm gia cầm H5N1 xảy ra từ 12/12/2003 đến 24/3/2004 với gần 400 ngàn gia cầm tiêu hủy; một ổ dịch cúm gia cầm H5N2 kết thúc ngày 10/12/2004. -Nhật bản Dịch cúm gia cầm H5N1 xảy ra từ 12/1/2004, đã tiêu hủy hơn 275 ngàn gà; ổ dịch cuối cùng xảy ra ngày 05/05/2004. -Thái Lan: Ổ dịch H5N1 đầu tiên được xác định vào ngày 23/01/2004 ở tỉnh Chiang Mai. Trong đợt dịch thứ nhất có 190 ổ dịch ở 89 huyện thuộc 42 tỉnh; số gia cầm tiêu hủy khoảng 30 triệu con. Đợt dịch thứ 2 phát lại từ 03/07/2004 đến 14/02/2005 có 1.552 điểm phát dịch tại 777 xã của 264 huyện của 51 tỉnh. Số gia cầm tiêu hủy là hơn 850 ngàn gà, hơn 687 ngàn vịt và khoảng 274 ngàn các loại khác. Gần đây dịch vẫn xảy ra rải rác, ngày 17/03/2005 dịch xảy ra trên 1 đàn gà 50 con tại tỉnh Sukhothai. -Campuchia: Dịch H5N1 xảy ra từ ngày 24/01/2004. Ổ dịch gần đây nhất xảy ra ngày 24/03/2005 tại tỉnh Kompot làm chết 19 gà thả vườn. -Lào: Dịch H5N1 bắt đầu xuất hiện từ 27/01/2004 đến 13/02/ 2004 ở 3 tỉnh, đã tiêu hủy hơn 155 ngàn gà. -Indonesia: Dịch cúm gia cầm H5N1 xuất hiện vào tháng 1/2004, đến tháng 11/2004 đã có 101 huyện thuộc 16/33 tỉnh có dịch. Gần đây, ngày 23/3/2005 dịch tiếp tục lây lan ở nam dảo Sulawesi làm nhiễm bệnh khoảng 128 ngàn gà ở 4 tỉnh, trong đó ổ dịch lớn nhất ở tỉnh Sidrap làm 101.400 gà nhiễm bệnh. Tính từ khi có dịch đến nay dã có 16,23 triệu gia cầm bị chết, trong đó có 8,17 triệu con ở trung tâm đảo Java (Indonesia không thực hiện chính sách tiêu hủy đàn mắc bệnh). -Trung quốc: Ổ dịch H5N1 đầu tiên phát hiện ra ngày 27/01/2004 ở tỉnh Quảng Tây, sau đó lan ra 15 tỉnh khác đặc biệt các tỉnh có biên giới với Việt Nam đều có dịch. Từ ngày 28/7/2004, Trung Quốc không phát hiện thêm ổ dịch mới. Số gia cầm tiêu hủy là hơn 5,6 triệu gà; hơn 1,7 triệu vịt và 16 ngàn chim cút và các loại chim khác. -Malaysia: Ổ dịch H5N1 đầu tiên được phát hiện ngày 19/8/2004 ở tỉnh Kalantan, ổ dịch cuối cùng ngày 22/11/2004; số gia cầm tiêu hủy hơn 18 ngàn con. -Vùng lãnh thổ Hồng Kông (thuộc Trung Quốc): Dịch H5N1 xảy ra ngày 26/1/2004, ca bệnh gần đây nhất được xác định vào ngày 10/02/2005. Ngoài các ổ dịch do virus cúm H5N1 nêu trên, còn có 7 nước và vùng lãnh thổ khác có dịch cúm gia cầm và các chủng khác là Pakistan, Hoa Kỳ, Canada, Nam Phi, Ai Cập, Cộng Hòa Dân Chủ Nhân Dân Triều Tiên và Đài Loan. -Đài Loan (thuộc Trung Quốc): Dịch cúm gia cầm H5N2 xảy ra ngày 20/1/2004, kết thúc ngày 05/03/2004. -Pakistan: Dịch cúm do H7N3 và H9N2 xảy ra trên gà tây từ tháng 11/2003 đến tháng 3/2004, số gia cầm chết và tiêu hủy là 1,7 triệu con. -Canada: Đã xảy ra 2 ổ dịch cúm gia cầm H7N3 (chủng virus độc lực thấp) xảy ra trên gà vào các ngày 19/02/2004 và 9/3/2004. Ca bệnh cuối cùng được ghi nhận vào ngày 20/04/2004. -Hoa Kỳ: 01 ổ dịch cúm gia cầm H7N2 (chủng virus độc lực thấp) duy nhất xảy ra trên gà vào ngày 11/02/2004 tại bang Delaware. -Nam Phi: 01 ổ dịch cúm H6 xảy ra trên gà công nghiệp và kết thúc ngày 25/03/2004; 01 ổ dịch khác do H5N2 xảy ra ngày 06/08/2004 trên đà điểu và kết thúc vào đầu tháng 12/2004. -Ai cập: Trong năm 2004, đã phát hiện 01 ổ dịch H10N7 trên vịt hoang dã. -Cộng hòa dân chủ nhân dân Triều Tiên: Từ ngày 25/2 đến ngày 26/3/2005 dịch cúm gia cầm H7N3 đã xảy ra ở Bình Nhưỡng, đã tiêu hủy khoảng 219.000 gà ở 3 trại trong vòng bán kính 5km. Bên cạnh đó, vào cuối tháng 3/2005 tại Myanmar đã phát hiện hàng ngàn gà chết nghi bệnh cúm gia cầm, tuy nhiên đến nay chưa có báo cáo xác định bệnh cúm xảy ra. 2.3.ĐẶC ĐIỂM SINH HỌC CỦA VIRUS CÚM TYP A – CĂN NGUYÊN GÂY BỆNH CÚM GIA CẦM 2.3.1.Đặc điểm về hình thái và cấu trúc Virus cúm typ A thuộc họ Orthomyxoviridae, gây bệnh cho mọi loài chim, một số động vật có vú và có thể lây sang người. Cùng với virus cúm A thuộc họ Orthomyxoviridae còn có 3 nhóm (typ) virus khác là: Virus cúm typ B chỉ gây bệnh cho người Virus cúm typ C gây bệnh cho người và lợn Virus nhóm Thogotovirus Đặc tính cấu trúc chung của tất cả 4 nhóm virus trong họ Orthomyxoviridae là hệ gene chứa acid Ribonucleic (RNA) một sợi có cấu trúc là sợi âm. Tùy loại virus, sợi RNA âm có độ dài từ 10.000 – 15.000 nucleotid. Mặc dù được nối với nhau tạo thành một sợi RNA liên tục, nhưng thực tế hệ gene của virus lại được phân chia thành 6-8 phân đoạn (segment), trong đó mỗi phân đoạn là một gene chịu trách nhiệm mã hóa cho một protein của virus. Khác với cá nhóm virus trong họ, do virus cúm typ A có nhiều biến chủng khác nhau. Cộng với khả năng thích ứng rộng rãi trên nhiều loại vật chủ và tính kháng nguyên luôn biến đổi, nhờ sự sắp xếp tái tổ hợp các phân đoạn gene nên cúm typ A được coi là nhóm virus nguy hiểm nhất trong họ Orthomyxoviridae. Trong lịch sử chính những virus cúm typ A là thủ phạm gây nên những đợt dịch cúm kinh hoàng ở người và gia cầm. Hạt virus (virion) có cấu trúc hình khối kéo dài đường kính trung bình khoảng 80 – 120nm. Vỏ virus là những protein có nguồn gốc từ màng tế bào mà virus đã lây nhiễm, bao gồm một số protein được glycosyl hóa và một số protein dạng trần không được glycosyl hóa. Protein bề mặt có cấu trúc từ các loại glycoprotein là các gai mấu có độ dài 10 – 14nm, đường kính 4 – 6nm. Khi nghiên cứu sâu hơn về cấu trúc hệ gene virus cúm typ A, Murphy và webster (1996) [46] cho thấy, tất cả các thành viên của nhóm virus cúm A đều có hệ gene là RNA một sợi có độ dài 13.500 nucleotid chứa 8 phân đoạn kế tiếp nhau mang mật mã cho 10 loại protein khác nhau của virus, 8 phân đoạn của sợi RNA có thể tách và phân biệt rõ ràng nhờ phương pháp điện di.
-Phân đoạn gene từ 1 - 3 mã hóa cho protein PB1, PB2 và PA là các protein có chức năng của enzyme polymerase, có vai trò bảo vệ sự sao chép và biên dịch RNA của virion (Biswas và Nayak, 1996) [30]. -Phân đoạn 4 mã hóa cho protein Hemagglutinin (HA) có chức năng bám dính vào thụ thể tế bào. Theo Bosch và cộng sự (1979) [31], Very và cộng sự (1992) [49], HA là một polypeptide gồm hai chuỗi HA1 và HA2 nối với nhau bằng đoạn oligopeptid ngắn, đặc trưng cho các subtyp H (H1 đến H15) trong tái tổ hợp tạo nên biến chủng. Mô típ của chuỗi nối oligopeptid chứa một số acid amin cơ bản làm khung, thay đổi đặc hiệu theo từng loại subtyp H. Sự biến đổi thành phần của chuỗi nối sẽ quyết định độc lực của biến chủng virus mới (Horimoto và Kawaoka, 1995) [36]. -Phân đoạn 5 mã hóa cho protein Nucleoprotein (NP) (Buckler White và Murphy, 1998) [32]. -Phân đoạn 6 là đoạn chịu trách nhiệm tổng hợp protein có vai trò như enzyme là Neuraminidase (NA), có chức năng acid sialic, giúp giải phóng RNA virus từ endosome và tạo virion mới. (Castrucci và Kaowaka, 1993) [33]. -Phân đoạn 7 mã hóa cho 2 tiểu phần protein đệm (Matrix protein) M1 và M2 (Holsinger và cộng sự 1994) [35], trong đó M2 là một tetramer có chức năng tạo khe H+, giúp cởi bỏ vỏ protein virus sau khi xâm nhập vào tế bào cảm nhiễm, M1 có chức năng tham gia vào quá trình tổng hợp và nảy mầm của virus. -Phân đoạn 8, với độ dài tương đối ổn định sẽ mã hóa cho 2 tiểu phần protein không cấu trúc NS1 và NS2 có các chức năng: chuyển RNA từ nhân ra kết hợp với M1, kích thích phiên mã, chống Interferon (luong và Palese, 1992) [44]. 2.3.2.Đặc tính kháng nguyên của virus cúm typ A Kháng nguyên của virus cúm diễn biến hết sức phức tạp do hiện tượng tái tổ hợp các thành phần cấu trúc của chủng này với chủng khác hoặc biến đổi từ chủng vô độc thành chủng có đọc lực cao hơn và gây bệnh. Sự đột biến của từng thành phần và loại hình kháng nguyên trong từng chủng virus cúm cũng góp phần tạo nên cấu trúc kháng nguyên mới, tạo các loại biến chủng mới với các đặc tính gây bệnh mới. Các loại protein kháng nguyên: Protein nhân (Nucleoprotein-NP), Protein đệm (matrix protein – M1), Protein hemagglutimin – HA, Protein enzyme cắt thụ thể (Neutraminidase – NA) là những protein kháng nguyên được nghiên cứu nhiều nhất. Một trong đặc tính kháng nguyên quan trọng của virus cúm là khả năng gây ngưng kết hồng cầu của nhiều loài động vật mà thực chất là sự kết hợp giữa mấu lồi kháng nguyên HA trên bề mặt của virus với thụ thể có trên bền mặt hồng cầu làm cho hồng cầu ngưng kết với nhau tạo mạng ngưng kết qua các cầu nối virus. Từ đặc tính kháng nguyên này có thể sử dụng các phản ứng ngưng kết hòng cầuHA và ngăn trở ngưng kết hồng cầu HI (Hemagglutination inhibitory test) trong chẩn đoán cúm gia cầm. Theo Ito và Kawaoka (1998) [40], sự phức tạp trong diến biến kháng nguyên mà virus cúm có được là do sự biến đổi và trao đổi kháng nguyên trong nội bộ gene và giữa gene hemagglutinin (HA) và gene neutraminidase (NA). Sự biến đỏi chính nội bộ gene hay biến dị ngẫu nhiên (drift) mà bản chất là sự thay đổi nucleotid trong đoạn gene là biến dị xảy ra liên tục thường xuyên trong quá trình tồn tại của virus cúm. Chính nhờ sự biến đổi này cho phép virus cúm A tạo nên 15 biến thể gene HA (H1 đến H15) và 9 biến thể gene NA (N1 đến N9). Cũng nhờ hiện tượng Drift của virus cúm có thể lí giải được không phải mọi H1, H5 hay Hx hoặc N1, N2, hay Nx đều giống nhau. Sự khác nhau trong chính các Hx hay Nx do biến dị ngẫu nhiên tạo nên tính thích ứng với từng loài vật chủ khác nhau và mức độ độc lực gây bệnh khác nhau ở chính mỗi loại hình tái tổ hợp HA và NA. (Suarez và cộng sự, 1998)[48]. Bên cạnh hiện tượng Drift, sự biến đổi hệ gene của virus cúm A còn được diễn ra nhờ hiện tượng tái tổ hợp gene – hiện tượng thay ca (Shift) ít xảy ra hơn, hiện tượng này chỉ xảy ra khi hai hay nhiều virus cúm cùng nhiễm vào tế bào. Tuy nhiên chỉ xuất hiện với tần xuất rất thấp nhưng khi hiện tượng tái tổ hợp gene (thay ca) xảy ra sẽ gây ra dịch lớn cho người và động vật, với mức độ nguy hiểm không thể lường trước được. Hiện tượng Shift ở virus cúm A cho thấy nguy cơ của sự lưu hành đồng thời nhiều loại virus cúm với số lượng lớn trong cùng một không gian và thời gian kéo dài. Một điều không thể không nói đến trong nghiên cứu về đặc tính khang nguyên của virus cúm là giữa các biến thể tái tổ hợp và biến chủng subtyp về huyết thanh học không hoặc rất ít có phản ứng chéo. Vì thế đực điểm này sẽ gây một trở ngại lớn cho các nghiên cứu nhằm tạo ra vaccine cúm cho người và động vật. (Kawaoka, 1992) [42], (Ito và cộng sự, 1998) [41]. Về mặt lý thuyết, khi xâm nhập vào cơ thể động vật, virus cúm A sẽ tạo nên sự hình thành của các kháng thể đặc hiệu, trong đó quan trọng hơn cả là kháng thể kháng HA, chỉ có loại kháng thể này mới có thể trung hòa virus cho bảo hộ miễn dịch. Một số kháng thể khác có tác dụng kìm hãm sự nhân lên của virus: Kháng thể kháng NA có tác dụng ngăn cản giải phóng virus, kháng thể kháng M2 có tác dụng ngăn cản chức năng protein M2 không cho quá trình bao gói virus xảy ra (Lu và cộng sự, 1999) [43], (Seo và Webster, 2000) [47]. 2.3.3.Thành phần hóa học và sức kháng của virus Bên cạnh các đặc tính về cấu trúc và đực tính kháng nguyên thành phần hóa học của virus cúm gia cầm cũng được nghiên cứu khá kĩ: RNA của virus chiếm 0,8 – 1,1%; protein chiếm 70 – 75%; lipid chiếm 20 – 24%và hydratcacbon chiếm 5 – 8% khối lượng của hạt virus. Protein cấu tạo virus chủ yếu là glycoprotein, còn lipid tập chung chủ yếu ở màng virus là loại lipid có gốc phospho, số còn lại là cholesterol và glucolipid. Về sức kháng của virus, các kết quả khảo sát cho thấy rằng, nhìn chung sức kháng của virus tương đối yếu. Virus cúm rất mẫn cảm với nhiệt độ, ở 50 – 60oC chỉ trong vài phút virus mất độc tính. Các dung môi hòa tan lipid, các chất sát trùng, các chất oxy hóa mạnh, fomaldehyt đều có khả năng bất hoạt virus. Điểm đẳng điện virus tương ứng với pH = 5,3. Ở vùng pH thấp (có tính acid) độc tính virus giảm nhanh hơn khu vực kiềm. Ngoài ra các tia phóng xạ cũng là tác nhân có khả năng diệt virus rất mạnh. 2.3.4.Quá trình nhân lên của virus Theo Kingsburg quá trình nhân lên (sinh sản) của virus được mô tả tóm tắt: Trước hết virus hấp phụ lên bề mặt tế bào nhờ thụ thể (receptor) có bản chất là Glycoprotein chứa acid sialic. Tiếp theo đó nhờ hiện tượng ẩm bào virus sẽ xâm nhập vào bên trong tế bào. Trong khoang ẩm bào khi pH điều hòa để giảm xuống mức thấp nhất sẽ xảy ra hiện hợp nhất giữa màng tế bào và virus. Lúc này Nucleocapsid của virus được vận chuyển vào nhân tế bào nhờ hệ thống enzyme sao chép của virus, ngay lập tức các sợi âm RNA ((-) RNA) của virus được chuyển thành các sợi (+) RNA để làm khuôn tổng hợp nhiều sợi (-) RNA mới. Đây là nguyên liệu của các virion mới. Các sợi (-) RNA tổng hợp mới được bao gói trong protein M1, NS và NP. Sau đó tổ hợp riboprotein này được vận chuyển qua màng nhân ra nguyên sinh chất và tiếp tục di chuyển đến sát màng tế bào ở vị trí có sự biến đổi đặc hiệu với virus. Song song với quá trình trên, một phần các sợi RNA thông tin của virus sau khi được sao chép trong nhân sẽ di chuyển ra nguyên sinh chất để điều khiển ribosome của tế bào tổng hợp nên protein cấu trúc và protein nguyên liệu. Tiếp đó tất cả các protein cấu trúc này sẽ được vận chuyển xuyên qua hệ thống võng mạc nội mô (RE) và hệ thống Golgi rồi được cắm lên màng tế bào nhiễm. Sự kết hợp cuối cùng của tổ hợp Nucleriboprotein và các protein cấu trúc HA, NA và M2 sẽ tạo nên hạt virus hoàn chỉnh mới và theo hình thức “nảy chồi” các hạt virion sẽ được giải phóng ra khỏi tế bào nhiễm. 2.3.5.Độc lực của virus Độc lực của virus cúm gia cầm có sự dao động lớn, phụ thuộc vào nhiều yếu tố mà trước hết là protein HA. Các nghiên cứu ở mức độ phân tử cho thấy khả năng lây nhiễm virus bị ảnh hưởng cởi tác động của men protease của vật chủđến sự phá vỡ liên kết hóa học sau khi dịch mã của phân tử ngưng kết. Mà thực chất là sự cắt đôi protein HA thành hai tiểu phần HA1 và HA2 và nhờ thế virus có thể xâm nhập vào tế bào. Tính thụ cảm của ngưng kết tố và sự phá vỡ liên kết của enzyme protease lại phụ thuộc vào các acid amin cơ bản tại điểm bắt đầu phá vỡ liên kết. Các enzyme giống như trypsine chỉ có khả năng phá vỡ liên kết khi chỉ có một phân tử Arginin, trong đó khi enzyme protease lại có thể phá vỡ nhiều acid amin của liên kết. Để giám định độc lực của virus bên cạnh một số phân tích khác, việc phân tích được trình tự nucleotid của gene HA có vai trò cực kì quan trọng. Vế lâm sàng, căn cứ vào khả năng gây bệnh, độc lực của virus cúm được chia làm 2 loại: Loại có độc lực cao (HPAI) và loại có độc lực thấp (LPAI). Với những chủng virus có độc lực cao, phân loại độc lực của virus về mặt lâm sàng dựa trên những thông báo ban đầu của Bankowki và cộng sự tại Hội nghị thế giới lần đầu tiên về cúm gia cầm năm 198, khi cho rằng những virus cúm có kháng nguyên bề mặt H7 thuộc loại có độc lực cao. Tuy nhiên người ta lại thấy rằng có những trận dịch gây chết tới 75% gà nhưng khi phân lập lại lại không thấy kháng nguyên H7 mà lại là H5. Vì thế để giải quyết vấn đề có cơ sở khoa học, các nhàn nghiên cứu đã thống nhất các chỉ số đánh giá virus cúm có độc lực cao: -Sau 10 ngày tiêm tĩnh mạch 0,2 ml nước trứng gà đã gây nhiễm virus được pha loãng 1/10 cho gà mẫn cảm từ 4-6 tuần tuổi, phải làm chết 75-100% gà thực nghiệm. -Virus gây bệnh cúm gà (có thể là typ phụ) phải làm chết 20% số gà mẫn cẩm thực nghiệm và phát triển tốt trên tế bào xơ phôi gà trong môi trường nuôi cấy không có trypsin. -Trong thực tế những chủng HPAI có thể gây chết 100% gia cầm nhiễm bệnh. Từ năm 1959 đến năm 2001, trên thế giới đã ghi nhận 19 chủng virus cúm của loài lông vũ được phân lập thuộc loại HPAI, trong đó một số chủng lây nhiễm và gây bệnh trên người (Collins và cộng sự, 2002) [34]. Tuy nhiên theo Horimoto và Kawaoka (2001) [37], cho đến nay người ta cũng chỉ thừa nhận có hai biến chủng virus có cấu trúc kháng nguyên H5 và H7 được coi là loại có độc lực cao và gây bệnh ở gia cầm, nhưng không phải tất cả các chủng mang gene H5 và H7 đều gây bệnh. Với những chủng virus có độc lực thấp (LPAI) thường gây nhiễm ở gia cầm nhưng không có triệu trứng lâm sàng, không có bệnh tích đại thể và tỉ lệ chết rất thấp. Tuy nhiên sự bội nhiễm vi khuẩn đặc biệt là Steptococcus, Staphylococcus…hoặc các bệnh khác cùng với cúm có thể làm cho bệnh gây ra do các virus cúm có độc lực thấp trở nên độc hơn và gây bệnh nghiêm trọng hơn. Nguyên nhân là do các vi khuẩn bội nhiễm sản sinh enzyme protesae phá vỡ các liên kết của ngưng kết tố ngay cả khi không có acid amin cơ bản. Thực tế chứng minh rằng các chủng có độc lực thấp trong quá trình lưu hành trong thiên nhiên và đàn thủy cầm sẽ có đột biến gene hoặc các đột biến tái tổ hợp để trở thành các chủng HPAI. (Mo và cộng sự, 1997) [44], (Harimoto và Kawaoka, 2001) [37], (Collins và cộng sự, 2002) [34]. 2.4.Dịch tễ học bệnh cúm gia cầm Virus cúm gia cầm phân bố khắp thế giới trong các loại gia cầm, dã cầm và động vật có vú. Nhìn chung sự lưu hành và phân bố của virus cúm rất khó xác định chính xác và bị ảnh hưởng bởi các loài vật nuôi hoang dã, tập quán chăn nuôi gia cầm, đường di trú của dã cầm, mùa vụ và ngay cả chủ quan của con người như hệ thống báo cáo, nghiên cứu, giám sát dịch bệnh. Virus được phân lập ở hầu hết các loài chim hoang dã: vịt trời, thiên nga, hải âu, mong biển và các loại vẹt, diều hâu v.v….Tuy nhiên tần xuất và số lượng phân lập được ở các loài thủy cầm trong đó phải đặc biệt kể đến vịt trời đều cao hơn các loài khác. Một số nghiên cứu cho thấy vịt từ khi nhiễm cho đến khi bắt đầu thải virus trong vòng 30 ngày và tiếp tục tồn tại trong số đông vịt trời cho đến mùa sinh sản tiếp theo để truyền cho con non qua đường tiêu hóa do virus bài thải qua phân gây ô nhiễm ao hồ. Những virus này không độc với vật chủ, được nhân lên ở đường ruột và trở thành nguồn reo rắc virus cho loài khác đặc biệt là gia cầm. (Bùi Quang Anh, Văn Đăng Kỳ, 2004) [2]. Về loài mắc bệnh: gà, vịt, ngan, chim cút, vẹt, bồ câu và chim hoang đều có nguy cơ mắc cúm. Ngoài ra nhiều loài động vật có vú như lợn, ngựa, chồn, hải cẩu, và thú hoang dã khác cũng có thể bị mắc bệnh do một số subtyp của cúm typ A gây nên. Trong chăn nuôi, theo Lê Văn Nam (2004) [16], bệnh thường xảy ra ở gia cầm 4 – 66 tuần tuổi. Gia cầm dễ mắc bệnh và có tỉ lệ chết cao ở những nơi bệnh phát ra đầu tiên ở gia cầm có độ tuổi sắp đẻ hoặc đang trong thời kì đẻ trứng cao nhất. Gia cầm có khả năng sản xuất càng cao thì càng mẫn cảm với bệnh, gia cầm cái mẫn cảm hơn so với con trống. Nhiều thông báo cho rằng vịt nuôi mặc dù nhiễm virus nhưng ít phát bệnh hơn, tuy nhiên thực tế diễn biến dịch cúm gia cầm ở Việt Nam trong vụ dịch đầu năm 2004 lại cho kết quả khác biệt với nhận xét trên. Nghiên cứu về sự truyền lây của virus cúm A cho thấy, khi gia cầm nhiễm virus cúm, virus sẽ được nhân lên trong đường hô hấp và tiêu hóa. Sự truyền lây của bệnh sẽ được thực hiện theo cả hai phương thức trực tiếp hoặc gián tiếp. Lây trực tiếp do con vật mẫn cảm tiếp xúc với con mắc bệnh qua các hạt khí dung bài tiết từ đường hô hấp hoặc qua phân, thức ăn, nước uống bị ô nhiễm. Lây gián tiếp qua không khí, dụng cụ chứa virus do gia cầm bài thải qua chim, thú, thức ăn, nước uống, xe vận chuyển, côn trùng v.v…. Với gia cầm nuôi, nguồn dịch đầu tiên thường thấy là từ các gia cầm nuôi khác nhau trong cùng một trang trại hoặc trang trại liền kề, từ gia cầm nhập khẩu, từ chim di trú, đặc biệt là thủy cầm từ chính hoạt động của con người và động vật có vú khác. Phần lớn sự phát sinh các ổ dịch gần đây đều có sự lây lan thứ cấp qua con người. Nhìn chung bệnh chủ yếu qua truyền ngang (qua tiếp xúc), chưa có bằng chứng cho thấy bệnh có thể truyền dọc qua trứng vì những phôi bị nhiễm virus thường sẽ chết mà không phát sinh thành con non được. Khi nghiên cứa khả năng tồn tại của virus ở ngoài môi trường cho thấy virus có khả năng tồn tại đa dạng phong phú, phụ thuộc vào nhiệt độ môi trường. Virus tồn tại khá lâu trong vật chất hữu cơ, ở nhiệt độ thấp (4oC) virus có thể tồn tại trong phân đến 35 ngày và 7 ngày ở 20oC. Trong xác chết virus tồn tại ở 23 ngày ở 4oC và vài ngày ở nhiệt độ thường. Theo Webster và cộng sự (1992) [49], trong nước ao hồ virus có thể duy trì đặc tính gây bệnh tới 4 ngày ở 22oC và trên 30 ngày ở 0oC. Có thể phân lập được virus cúm gia cầm từ nước hồ nơi có thủy cầm nhiễm bệnh (Hinshaw và cộng sự, 1979) [38]. Ở thể HPAI, các nghiên cứu cho thấy chỉ 1 gram phân gà nhiễm bệnh có thể chứa một lượng virus đủ lây nhiễm cho 1 triệu gà. Như vậy từ các nguồn thức ăn, nước uống, chất thải, vật dụng, dụng cụ ... bị ô nhiễm, virus cúm có thể tồn tại một thời gian nhất định, tùy thuộc vào nhiệt độ môi trường và đây chính là nhuồn bệnh nguy hiểm tiềm tàng để không những gia cầm mà các động vật khác cũng có thể nhiễm bệnh. Về tính mùa vụ, bệnh cúm có thể xảy ra quanh năm nhưng cũng chịu sự tác động thúc đẩy bởi nhiều yếu tố stress như thay đổi đột ngột về thời tiết, thức ăn, nước uống, quản lí chăm sóc .v.v… Thực tế bệnh thường hay xảy ra vào mùa có khí hậu lạnh, độ ẩm cao, thời tiết thay đổi đột ngột do làm ảnh hưởng đến hệ miễn dịch của cơ thể. Ở Việt Nam, qua quan sát trong 3 năm 2003 – 2005 cho thấy bệnh xảy ra mạnh vào vụ đông xuân vì đây là lúc thời tiết có nhiều bất lợi cho sức khỏe đàn gia cầm và tạo điều kiện cho sự tồn tại của virus ngoài môi trường lạnh và ẩm. Về mặt xã hội đây cũng là khoảng thời gian mà mật độ chăn nuôi, các hoạt động buôn bán, giết mổ gia cầm diễn ra cao nhất trong năm. 2.5.TRIỆU CHỨNG LÂM SÀNG CỦA BỆNH CÚM GIA CẦM Thời kì ủ bệnh thường ngắn, từ vài giờ tới 3 ngày, tùy theo số lượng, độc lực của virus, đường nhiễm bệnh, loài cảm nhiễm virus gây bệnh. Một số nghiên cứu cho thấy thời gian ủ bệnh trong nhiều trường hợp có thể dài hơn đến 7 ngày và lâu nhất có thể đến 14 ngày (Lê Văn Nam, 2004) [16]. Biểu hiện triệu chứng lâm sàng của bệnh phụ thuộc vào nhiều yếu tố: chủng virus, số lượng virus, loài cảm nhiễm, tuổi, giới tính, điều kiện môi trường (nhiệt độ, ánh sáng, thành phần không khí .v.v…), chế độ dinh dưỡng, tình trạng miễn dịch của vật chủ trước khi nhiễm bệnh, sự bội nhiễm của một số vi sinh vật khác. Nhìn chung triệu chứng lâm sàng của bệnh cúm gia cầm vô cùng phức tạp, đa dạng trong các thể bệnh kể cả ngay trong cùng một loài gia cầm. Biểu hiện bệnh có thể từ không hoặc có rất ít dấu hiệu lâm sàng nhưng chết đột ngột đến biểu hiện lâm sàng điển hình và các thể bệnh nhẹ hoặc ẩn tính. 2.5.1.Triệu chứng lâm sàng điển hình của bệnh cúm gia cầm chủng độc lực cao Khi nhiễm các chủng virus độc lực cao (HPAI) gia cầm thường chết đột ngột, tỉ lệ tử vong khá cao có khi lên đến 100% trong vài ngày. Các triệu chứng về hô hấp thường xuất hiện đầu tiên và khá điển hình như ho khẹc, hắt hơi, thở khò khè, vảy mỏ, chảy nhiều nước mắt, nước mũi. Tiếp theo là mi mắt bị viêm, mặt phù nề sưng mọng. Mào tích dày lên do thủy thũng, tím tái, có nhiều điểm xuất huyết. Thịt gà bị bệnh thường thâm xám, dưới da vùng chân có xuất huyết. Bên cạnh các triệu chứng về hô hấp, gia cầm bị bệnh cúm còn có biểu hiện thần kinh: đi lại không bình thường, run rẩy, mệt mỏi, nằm li bì tụ đống với nhau. Ngoài ra khi ra cầm mắc cúm thường tiêu chảy mạnh, phân loãng trắng hoặc xanh, năng xuất trứng giảm mạnh. 2.5.2.Triệu chứng lâm sàng của bệnh do những chủng virus cúm độc lực thấp gây nên Gia cầm bị nhiễm các chủng virus có độc lực yếu hơn cũng có những triệu chứng tương tự như ở bệnh do những chủng có độc lực cao gây ra, nhưng mức độ biểu hiện nhẹ hơn và tỉ lệ chết thấp hơn. Tuy nhiên khi có sự cộng thêm với vi khuẩn hoặc virus khác có khả năng gây bệnh hoặc điều kiện môi trường bất lợi thì tỷ lệ tử vong có thể đạt 60 – 70% và các triệu chứng lâm sàng cũng dần nặng hơn. 2.6.BỆNH TÍCH Cũng như triệu chứng lâm sàng, mức độ bệnh tích đại thể của bệnh cúm gia cầm cũng rất đa dạng, phụ thuộc rất nhiều vào độc lực của virus và quá trình diễn biến của bệnh. Các biến đổi đặc trưng về tổ chức học bao gồm: phù nề, xung huyết, xuất huyết và thâm nhập limpho đơn nhân cơ vân, cơ tim, lách, phổi, mào tích, gan, thận, tổ chức thần kinh.Ngoài sự thâm nhiễm tế bào limpho đơn nhân còn có các tế bào đặc trưng cho phản ứng viêm hoại tử. Đi sâu nghiên cứu, nhiều tác giả đã nêu lên một số khác biệt về đặc điểm bệnh tích do từng chủng virus cúm gây ra. Khi bị nhiễm H9N5, có hoại tử nặng ở hệ lâm ba và xuất hiện đốm hoại tử ở lách nhưng khi nhiễm H5N2, H5N1 lại không có hoại tử ở hệ lâm ba. Hay hoại tử ở cơ tim, viêm cơ tim thường thấy ở các gia cầm mắc chủng H5N3. Những chủng virus gây ra các triệu chứng thần kinh thì bệnh tích thấy mạch vành xưng, hoại tử các tế bào thần kinh mà ít thấy tụ huyết, xuất huyết ở các mô thần kinh. 2.7.CHẨN ĐOÁN BỆNH CÚM GIA CẦM Việc chẩn đoán cúm gia cầm do nhiễm virus typ A chủ yếu là phải phân lập và định danh virus kết hợp với chẩn đoán dựa trên triệu chứng lâm sàng, xác định bệnh tích đại thể, vi thể, dịch tễ học và một số phản ứng huyết thanh học. Theo chẩn đoán thường quy của Trung tâm chẩn đoán thú y Trung ương – Cục thú y, sơ đồ chẩn đoán phòng thí nghiệm của bệnh cúm hiện nay như sau:
 -ELISA -AGP -HI -Subtype H -Subtype -Subtype N -Subtype N *Phân lập virus Là một chẩn đoán cơ bản, có ý nghĩa quyết định. Để phân lập virus, thường sử dụng mẫu bệnh phẩm là phổi, khí quản, não, lách. Việc phân lập được thực hiện trên môi trường tế bào dòng thận chó (Madin – Darby Canine Kidney Cells – MDCK) hoặc trên phôi trứng gà. *Phân lập virus trên môi trường tế bào Để có thể lây nhiễm bệnh phẩm trên môi trường tế bào, trước hết phải thực hiện nuôi cấy tế bào trên chai T – 25 trong môi trường phát triển tế bào với các hóa chất, nguyên vật liệu cần thiết. Sau khi thảm tế bào mọc từ trên 90% sau 24 – 72h có thể sử dụng phân lập virus bằng việc tiêm truyền nhiễm dịch bệnh phẩm đã xử lý kháng sinhhoặc qua lọc trên bề mặt tế bào. Quá trình lây nhiễm bệnh phẩm được bổ sung môi trường nuôi cấy virus (D – MEM với TCPK treaed trypsine) trong tủ ấm CO2. Tiến hành quan sát bệnh tích tế bào CPE hàng ngày. Có thể thu hoạch dịch nổi trong chai tế bào đã cấy virus sau 1 - 7 ngày để kiểm tra bằng phản ứng HA. Nếu âm tính có thể cấy chuyển trên tế bào thêm 2 – 3 lần. Mẫu phân lập trên tế bào được bảo quản trong tủ -70oC. *Phân lập virus trên phôi trứng Sư dụng trứng gà 9 – 11 ngày tuổi để phân lập virus. Mỗi mẫu bệnh phẩm tiêm cho 3 trứngvà được ấp ở 37oC trong 7 ngày. Trước khi thu hoạch nước trứng phải cất trứng vào tủ lạnh 4oC trong 4h hoặc để ở tủ âm trong 20 phút ở nhiệt độ -20oC. Nước trứng (nước niệu mô phôi trứng) được cho vào ống nghiệm 10ml và bảo quản ở tủ -70oC. Mẫu phân lập được kiểm tra bằng phản ứng HA, nếu âm tính có thể cấy chuyển trên phôi trứng gà thêm 2 – 3 đợt.. *Định danh virus Sau khi phân lập được virus từ môi trường tế bào hoặc trên phôi trứng gà, có thể giám định virus bằng các HI test để giám định subtyp H; NI test để xác định subtyp N hoặc bằng phương pháp RT-PCR để xác định subtyp H, N. Phản ứng huyết thanh học được dùng để nhận biết các kháng thể có từ 7 – 10 ngày sau khi nhiễm virus. Tính đa dạng của kháng nguyên bề mặt của virus cúm typ A đã ảnh hưởng rất lớn đến việc áp dụng các phương pháp huyết thanh học truyền thống để chẩn đoán bệnh. Trong thưc tế có thể sử dụng các phản ứng huyết thanh sau để tìm kháng thể cúm: HI, ELISA, AGP (khuyếch tán miễn dịch). *Sử dụng xét nghiệm nhanh BD Dir hoặc Quickvue Phương pháp BD Direc – antigene TM Flu A+B là phương pháp xét nghiệm màng miễn dịch nhanh để phát hiện trực tiếp và định tính của kháng nguyên virus cúm typ A và B có trong dịch rửa hầu họng. Phương pháp này chỉ có thể phân biệt được kháng nguyên cúm typ A và typ trong xét nghiệm. 2.8.KHỐNG CHẾ BỆNH CÚM GIA CẦM Do sự phân bố và lưu hành của cúm gia cầm rât rộng về địa dư và đa dạng loài động vật cảm nhiễm nên việc xác định chính xác sự lưu hành và phân bố của virus cúm là điều cực kì khó khăn. Điều đó cũng có nhĩa là để kiểm soát được dịch cúm gia cầm đòi hỏi phải xây dựng đồng bộ hệ thống chính sách quản lí của nhà nước và hệ thống biện pháp kĩ thuật. Tuy nhiên vì điều kiện kinh tế xã hội của mỗi nước có đặc thù riêng nên khó có thể hoạch định được một chính sách chung về khống chế cúm gia cầm cho tất cả các quốc gia. Bên cạnh đó, mặc dù có những đặc điểm riêng về dịch tễ học so với các bệnh truyền nhiễm, nhưng nhìn chung sự bùng phát cúm gia cầm vẫn tuân theo những quy luật chung của quá trình sinh dịch, thực chất là sự tác động qua lại giữa 3 khâu: nguồn bệnh, động vật cảm thụ, yếu tố truyền lây của bệnh truyền nhiễm nói chung. Vì thế nguyên tắc của khống chế bệnh cúm gia cầm chính là sự tác động vào các khâu trên của quá trình sinh dịch. Điều đó chính là việc phá vỡ vòng truyền lây của tác nhân gây bệnh và hiệu quả nhất là sự tác động vào điểm yếu nhất của quá trình truyền lây. Theo khuyến cáo của OIE thì đó là các hoạt động: Loại trừ tác nhân gây bệnh: tiêu hủy gia cầm nhiễm bệnh, sát trùng tiêu độc Giảm tiếp xúc giữa tác nhân và vật chủ: sử dụng vaccine phòng bệnh, tăng cường chăm sóc nuôi dưỡng. Thay đổi môi trường sống: thực hiện an toàn sinh học, ngăn chặn tác nhân gây bệnh xâm nhập môi trường. Cụ thể hoạt động kiểm soát cúm gia cầm bao gồm một số điểm cơ bản: Xây dựng chính sách về kiểm soát bệnh mà thực chất là ban hành khung pháp lý để đảm bảo hoạt động phòng chống dịch có hiệu quả. Đó là việc áp dụng các biện pháp ngăn chặn sự xâm nhập của virus cúm thông qua đường thương mại với các nước khác và thực hiện việc giết hủy hàng loạt gia cầm nhiễm bệnh. Áp dụng các biện pháp an toàn sinh học nghiêm ngặt nhằm khống chế sự lây nhiễm virus cúm gia cầm xâm nhập ban đầu. Thực hiện chiến lược tiêm phòng vaccine hợp lý cho đàn gia cầm. * Phòng bệnh Hiện nay chưa có thuốc đặc hiệu để trị bệnh cúm gia cầm. Việc sử dụng Amantadin hydrochorid và Rimantadine hydrochorid tuy có làm giảm tỷ lệ chết nhưng không thay đổi tỷ lệ nhiễm và gia cầm vẫn tiếp tục bài thải virus. Ngoài các thuốc điều trị cơ bản trê, người ta còn sử dụng các biện pháp điều trị hỗ trợ khác như chống suy hô hấp, dùng kháng sinh để giảm tác động của vi khuẩn cộng nhiễm. Tuy nhiên trong thực tế nhìn chung những thuốc chống virus trên đều bị kháng tương đối nhàn và còn có nhiều tác dụng phụ kể cả những thuốc chống cúm mới nhất là những loại có tác dụng ức chế Neuraminadase như Tamiflu hay Zanamivir. Chính vì thế, một trong những chính sách phòng bệnh có tính chủ động hiện nay là việc sử dụng vaccine tiêm phòng cho gia cầm đã đem lại những kết quả khả quan trong phòng bệnh: Tạo được kháng thể cho gia cầm, có tác dụng làm giảm số nhiễm và số chết nhờ việc làm giảm tình trang mẫn cảm của gia cầm với chủng virus gây bệnh. Giảm bài thải virus 1.000 lần so với gia cầm không tiêm và ngừng hẳn sự bài thải virus sau 13 – 18 ngày tiêm phòng, nhờ vậy làm giảm khả năng lây truyền bệnh. Giảm thiểu việc loại thải những đàn gia cầm khỏe mạnh, giảm thiệt hại về kinh tế cho chăn nuôi gia cầm công nghiệp. Tuy nhiên việc sử dụng vaccine phòng cúm cho gia cầm hiện nay vẫn còn một số hạn chế: Hiệu lực và độ dài miễn dịch chưa được nghiên cứu đầy đủ. Có thể gây trở ngại cho chẩn đoán huyết thanh học. Do thời gian nung bệnh của cúm gia cầm ngắn (1 – 3 ngày) nên việc sử dụng vaccine khó đạt được hiệu quả khi dùng trong các ổ dịch. Các hạn chế khi tiêm phòng vaccine đang dần được tháo gỡ bằng việc hiện nay đã sản xuất được một số loại vaccine cho phép phân biệt được kháng thể do mắc virus cúm thực địa hay kháng thể do vaccine do vaccine sản sinh ra hoặc sử dụng việc nuôi chung gia cầm không tiêm phòng (gia cầm chỉ báo) vào đàn được tiêm phòng để theo dõi giám sát. Theo Ilaria Capua và Stefano Marangon (2004) [6], một số vaccine cúm gia cầm được ghi nhận hiện nay: Vaccine vô hoạt đồng chủng: Là vavccine được sản xuất chứa chủng virus gây bệnh cúm thực địa (auto genous) hay còn gọi là vaccine tự phát sinh. Vaccine này được sử dụng tại Mexico, Pakistan và gần đây là ở Trung Quốc. Một trong những vaccine thuộc loại này đang được sử dụng hiện nay là vaccine của Aventis Pasteur, Nobilis, và Weike Harbin. Nhược điểm cơ bản của vaccine này là không thể phân biệt được gia cầm tiêm vaccine và gia cầm nhiễm cúm thực địa khi kiểm tra kháng thể. Vaccine dị chủng Là những vaccine được sản xuất tương tự như vaccine đồng chủng, điểm khác biệt là các chủng virus vaccine có cùng kháng nguyên H với chủng virus thực địa nhưng có kháng nguyên N dị chủng, nhờ thế có thể phân biệt được cá thể tiêm phòng với cá thể nhiễm virus khi thực hiện giám sát huyết thanh học. Vaccine loại này đang được sử dụng tại Trung Quốc, một số nước Châu Âu và Châu Mỹ. Vaccine tái tổ hợp Một vài loại vaccine tái tổ hợp virus cúm với virus đậu gà đã được sử dụng. Với vaccine này, virus đậu được sử dụng như một vector để ghép gene mã hóa cho kháng nguyên H và N của virus cúm vì vậy sử dụng vaccine này cho phép phân biệt dduocj gia cầm tiêm vaccine và gia cầm nhiễm cúm. Vaccine này chủ yếu được sử dụng rộng rãi ở Mexico và bắt đầu được sử dụng ở Trung Quốc từ tháng 1/2005 (Tô Long Thành, 2005) [24]. Mặc dù biện pháp sử dụng vaccine tiêm phòng đã bước đầu được ghi nhận như một công cụ khống chế bệnh cúm. Tuy nhiên chương trình tiêm phòng vaccine chỉ thực sự hiệu quả khi được đồng thời thực hiện cùng hàng loạt các biện pháp khác: thực hiện an toàn sinh học triệt để, chương trình kiểm tra huyết thanh học định kì … (Trần Xuân Hạnh, 2004) [12]. * Chiến lược khống chế bệnh cúm gia cầm ở Việt Nam Theo ban chi đạo Quốc Gia phòng chống dịch cúm gia cầm (2005) [3], trong giai đoạn hiện nay chiến lược khống chế cúm gia cầm ở Việt Nam bao gồm một số hoạt động cơ bản: Quy hoạch chăn nuôi gia cầm theo hướng phát triển chăn nuôi công nghiệp và bán công nghiệp, hạn chế chăn nuôi nông hộ. Không nuôi gia cầm trong nội thi, khu chăn nuôi phải cách ly khu dân cư và không nuôi chung gà với thủy cầm. Quy hoạch giết mổ gia cầm và mạng lưới lưu thông phân phối, xây dụng cơ sở giết mổ tập chung, xóa bỏ chợ bán gia cầm sống trong thành phố. Kiểm soát thú y với các hoạt động lưu thông gia cầm, sản phẩm gia cầm trên thị trường. Tăng cường pháp chế, hệ thống tổ chức, năng lực chung của ngành thú y, các nghiên cứu về dịch bệnh, chế phẩm sinh học và hợp tác quốc tế. 2.9.TÌNH HÌNH DỊCH CÚM GIA CẦM VIỆT NAM * Diễn biến dịch: Dịch cúm gia cầm xuất hiện đầu tiên ở nước ta vào cuối tháng 12/2003, để thuận lợi cho việc đánh giá về dịch tễ có thể chia quá trình dịch thành 3 đợt: - Đợt dịch thứ nhất từ 12/2003 đến 30/3/2004: Lần đầu tiên trong lịch sử nước ta dịch cúm gia cầm xuất hiện ở Hà Tây, Long An va Tiền Giang. Dịch lây lan rất nhanh chỉ trong 2 tháng, đến ngày 27/2/2004 dịch đã xuất hiện ở 57 tỉnh thành với 2574 xã phường của 381 huyện thị có dịch. Tổng số gia càm mắc bệnh, chết và tiêu hủy là 58,66 triệu con (16,71% tổng đàn). - Đợt dịch thứ hai từ tháng 4 đến 11/2004: Trong giai đoạn này dịch phát ra rải rác ở quy mô nhỏ với 46 xã phường của 32 huyện thị thuộc 17 tỉnh có dịch. Số gia cầm chết và tiêu hủy là 84.078 con. - Đợt dịch thứ 3 từ tháng 12/2004 đến 4/2005: Dịch xuất hiện ở 670 xã của 182 huyện thuộc 36 tỉnh thành phố (15 tỉnh phía bắc và 21 tỉnh phía nam). * Nhận xét về dịch tễ học: Về phân bố địa lý: Dịch chủ yếu xảy ra ở vùng đất thấp, chủ yếu trồng lúa nước, hệ thống sông ngòi, kênh rạch nhiều, mật độ chăn nuôi cao đặc biệt là những vùng có số lượng đàn thủy cầm lớn, nuôi chủ yếu theo hình thức thả đồng, di chuyển rộng ở địa phương. Về thời gian xảy ra dịch: Trong hai năm qua dịch phát nặng theo chu kỳ từ tháng 12 năm trước, cao điểm vào cuối tháng 1 đầu tháng 2 và đến tháng 3 năm sau. Đây là khoảng thời gian thời tiết thay đổi, độ ẩm cao, nhiệt độ thường xuống thấp tạo điều kiện cho virus cúm tồn tại, phát triển và lây lan. Đồng thời thời này là lúc mật độ chăn nuôi gia cầm và hoạt động vận chuyển gia cầm, sản phẩm gia cầm diễn ra cao nhất trong năm, là điều kiện về mặt xã hội thuận lợi cho sự bùng phát dịch. Về loài mắc bệnh: Ở đợt dịch thứ nhất và tứ 2 tỷ lệ ga mắc bệnh cao hon vịt, ngan. Nhưng đợt dịch thứ 3 đã có sự thay đổi lớn khi các thống kê cho thấy tỉ lệ mắc bệnh, chết và tiêu hủy ở vịt cao gấp 2 lần gà. Điều này cho thấy mầm bệnh đã lây lan, tồn tại trong đàn thuy cầm có thể tăng độc lực và bột phát thành đợt dịch thứ 3. Tỷ lệ dương tính huyết thanh ở đàn thủy cầm tăng từ 15% trong đợt 2 lên 39,6% trong đợt 3. Về loại hình, mức độ và quy mô dịch: Địch phát ra ở tất cả các loại hình chăn nuôi, tỉ lệ mắc bệnh cao nhất ở loại hình chăn nuôi hỗn hợp các lọa gia cầm (đặc biệt là gà với vịt) và giảm dần ở nhũng trại chăn nuôi gà có số lượng lớn. Quy mô của đợt 1 là lớn nhất, trong đợt 2 và 3 mặc dù dịch xảy ra ở nhiều tỉnh thành nhưng quy mô giảm đi nhiều (Ban chỉ đạo Quốc Gia phòng chống dịch cúm gia cầm, 2005) [3]. 2.10.NGHIÊN CỨU TRONG NƯỚC VỀ BỆNH CÚM GIA CẦM Vì là lần đầu tiên xảy ra ở Việt Nam, cộng với những thiếu thốn về cơ sở vật chất, trang thiết bị nên các nghiên cứu về cúm gia cầm gặp nhiều khó khăn. Tuy nhiên với mục tiêu nghiên cứu cúm gia cầm ở Việt Nam cũng như nghiên cứu áp dụng các phương pháp chống cúm hiện đại trên thế giới để đề ra các biện pháp khống chế cúm khoa học, phù hợp với hoàn cảnh dịch bệnh ở nước ta, các nghiên cứu về cúm gia cầm bước đầu thu được kết quả: * Kết quả nghiên cứu phân lập virus, tìm hiểu nguồn gốc dịch cúm: Virus cúm gia cầm đầu tiên được phân lập ở Việt Nam vào ngày 7/8/2003 từ các mẫu bệnh phẩm ngan mắc bệnh. Tiếp đó nhờ sự hợp tác giúp đỡ của Trung tâm khống chế dịch bệnh CDC (Mỹ), vào tháng 9/2003 đã xác định được kháng nguyên H5 của virus cúm và đến 1/2004 đã xác định được kháng nguyên N của virus cúm phân lập tại các ổ dịch gà N1. Khi phân tích các mẫu virus cúm thông qua giải mã gene của virus, Nguyễn Tiến Dũng, Malik Peiris, Robert Webster, Đào Thanh Vân (2004) [9], đã cho thấy dịch cúm gia cầm tại Việt Nam là do một loại virus duy nhất (cả về không gian và thời gian) gây ra. Có nghĩa là dịch có nguồn gốc từ một ổ dịch ban đầu sau đó lây lan ra khắp cả nước. Virus cúm gia cầm H5N1 Việt Nam có nguồn gốc từ các virus cúm lưu hành ở Trung Quốc. * Kết quả nghiên cứu về đặc điểm dịch tễ học Trong quá trình nghiên cứu đã xác định được các loại gia cầm mắc bệnh là gà, gà tây, chim cút, đà điểu, bồ câu, vịt, ngan và ngỗng. Thực tế về loài mắc bệnh ở Việt Nam có điểm khác so với loài mắc của cúm gia cầm trước đây chỉ măc ở gà, gà tây và chim cút (các loài chim cạn). Trong khi đó dịch cúm gia cầm ở Việt Nam phát rất mạnh không chỉ các loài chim cạn mà cả ở cầm, các loài trước đây được coi là vật mang virus mà không mắc bệnh. Tỷ lệ mắc bệnh gần 100%, tỷ lệ tử vong trung bình 60% (Lê Văn Nam, 2004) [16], (Bùi Quang Anh, Văn Đăng Kỳ, 2004) [2]. Các nghiên cứu của Nguyễn Tiến Dũng, Đỗ Quý Phương (2005) [10], khi khảo sát dịch tễ của 3 đợt dịch đã chỉ ra rằng nguồn gốc các ổ dịch trong vụ dịch đầu năm 2004 là do sự di chuyển của đàn gia cầm giống, còn đợt dịch thứ 2 là từ ngan sau đó đến vịt gây ra và ở đợt dịch thứ 3 ở Tây Nam Bộ là do dịch địa phương do bán gia cầm bệnh và vịt mang trùng. Một nghiên cứu khác tại đồng bằng Bắc Bộ cho thấy tỷ lệ gà có huyết thanh (+) ở hộ chăn nuôi gà là 9,4%, trong khi đó ở hộ chăn nuôi lẫn gà, vịt là 69,5%. Điều đó đồng nghĩa với nguy cơ mắc cúm gia cầm của gà nuôi lẫn thủy cầm cao gấp 8 lần so với nuôi riêng biệt. Cũng nằm trong các nghiên cứu về sự lưu hành của virus cúm nguyễn Tiến Dũng và cộng sự (2005) [10], khi khảo sát 2.000 mẫu huyết thanh và mẫu ngoáy dịch ổ nhớp ở một số tỉnh phía Bắc và Tây Nam Bộ cho kết quả trugn bình cứ 1.000 vịt có 1,5 vịt mang virus cúm H5. Ngoài virus cúm H5 vịt còn nhiễm H3, H4, H6, H9, và H11. Khi nghiên cứu sự nhiễm H5N1 trên vịt các kết quả nghiên cứu của tác giả trên còn cho thấy: Virus H5N1 sau khi nhân lên ở vịt sẽ dễ dàng biến đổi kháng nguyên HA. Hai loại virus được thải ra từ vịt bệnh, một loại cường độc và một loại không cường độc với vịt đều có khả năng gây bệnh cho gà. Vì thế vịt được coi là nguồn dự trữ virus H5N1 để lây bệnh lâu dài do có thể vẫn nhiễm virus mà không phát bệnh. Thời gian tồn tại ngoài môi trường, thời gian thải virus cũng như số lượng virus được thải ra từ vịt nhiễm H5N1 đều tăng hơn loại virus H5N1 Hồng Công năm 1997. * Kết quả khảo sát virus cúm trong đàn chim di cư và sự nhiễm virus cúm gia cầm trên lợn Một trong những nghiên cứu khác về cúm gia cầm là khảo sát lưu hành virus trong đàn chim di cư. Thông qua phân tích 320 mẫu phân chim tại một số địa phương, bằng phương pháp RT-PCR và phân lập virus kết hợp với điều tra tình hình dịch bệnh của đàn chim cho kết quả chưa phát hiện thấy virus cúm. Kết quả khảo sát 3.500 mẫu huyết thanh để tìm kháng thể H5N1 khi khảo sát sự nhiễm virus cúm trên lợn đã cho thấy lợn có khả năng nhiễm H5N1 với tỷ lệ (+) rất thấp (8/3.500), khi nhiễm không phát bệnh như người và như vậy không có sự lây lan từ lợn và từ lợn sang người tại thời điểm nghiên cứu.